Внутрибольничные инфекции (ВБИ)

Понятие ВБИ - собирательное; оно включает различные нозологические формы. Согласно определению Комитета экспертов ВОЗ, «внутрибольничной инфекцией (синонимы: госпитальная, нозокомиальная инфекция), является любое клинически распознанное заболевание, которое поражает больного в результате его поступления в больницу или обращения в нее за лечебной помощью, или инфекционное заболевание сотрудника больницы вследствие его работы в данном учреждении вне зависимости от появления симптомов заболевания во время пребывания больнице или после». (Комитет экспертов ВОЗ, 1979г.).

Классификация ВБИ. Классификация ВБИ представляет определенные трудности. В классификации ВБИ принят как этиологический критерий (например, внутрибольничная дифтерия, сальмонеллез, корь, стафилококковая инфекция и т. д.), так и критерий локализации инфекционного процесса (инфекции дыхательных путей, кишечные, раневые инфек­ции, инфекция кожи, подкожной клетчатки, суставов и т. д.). Приоритет в классификации ВБИ имеет критерий локализа­ции инфекционного процесса, что обосновано преобладанием условно-патогенных микроорганизмов в качестве этиологиче­ских агентов ВБИ, для которых характерна политропность.

С 1990 г. в России заболеваемость ВБИ регистрируют в рамках государственной статистической отчетности:

а. гнойно-септические инфекции (ГСИ) у родильниц;

а. ГСИ у новорожденных;

а. ГСИ послеоперационные;

а. кишечные инфекции;

а. инфекции мочевых путей.

При госпитализации пациента врач должен исключить воз­можность "заноса инфекции", так как пациент мог находиться в инкубационном периоде к моменту поступления в стацио­нар. При подозрении ВБИ у выписанного из стационара па­циента необходимо проведение специального эпидемиологи­ческого расследования. В качестве заноса инфекционной бо­лезни рассматривают случай инфекционного заболевания, имеющегося у больного на момент поступления в стационар или проявившегося в стационаре через срок, меньший, чем инкубационный период, т. е. когда заражение произошло до момента госпитализации.

Этиология ВБИ. Внутрибольничная инфекция обусловлена активностью тех классов микрофлоры, которая, во-первых, встречается повсеместно с выраженной отчетливостью тенденции к распространению. Эта агрессивность объясняется значительной природной и приобретенной устойчивостью к повреждающим химическим и физическим факторам окружающей среды, относительную непритязательность роста и размножения, тесное родство с нормальной микрофлорой, высокая контагиозность,, выраженная способность к формированию устойчивости к антимикробным средствам, порой разное поведение in vitro и in vivo. Этиологическими агента­ми ВБИ являются как патогенные, так и условно-патогенные и свободноживущие микроорганизмы (по современным данным более 300). Причиной ВБИ могут быть микроорганизмы, принадлежащие к различным таксономическим группам: ви­русы (возбудители простого герпеса, цитомегалии, аденовирусной инфекции, гриппа, парагриппа, Эпидемического паротита, кори,, энтеровирусы, риновирусы,, реовирусы, ротавирусы – наиболее распространенные возбудители диареи у детей во всем мире, воэбудители вирусных гепатитов. Бактерии (большая группа грамотрицательных палочковидных бактерий, которая в этиологии ВБИ сейчас существенно теснит кокковую флору; эшерихии, сальмонеллы, шигеллы, клебсиэллы, протей, иерсиния, хафна, серация, энтеробактер, цитобактер, синегнойная палочка и др.; грибы (условно-патогенные и патогенные грибы), род дрожжеподобных грибов Кандида- всего 80 видов, 20 из которых патогенны для человека; род плесневых грибков; возбудители поверхностных и глубоких микозов (возможно и внутрибольничного происхождения), хистоплазма, криптококус, бластомикоз., кокцидиоз и патогенные актиномицеты. Простейшие (лямблии, амебы, пневмоцисты, криптоспоридии и др.).

К патогенным микроорганизмам, имеющим определенное значение в этиологической структуре ВБИ, относят возбуди­телей кишечных инфекций (шигеллы, сальмонеллы, энтеропатогенные кишечные палочки), возбудителей инфекций ды­хательных путей бактериальной (дифтерия, коклюш, менингококковая инфекция и др.) и вирусной (грипп, ОРВИ, корь, краснуха, эпидемический паротит, ветряная оспа и др.) при­роды, а также вирусы гепатитов В, С, ВИЧ.

Наибольшую роль в качестве возбудителей ВБИ играют ус­ловно-патогенные микроорганизмы, список которых неуклонно увеличивается. Являясь постоянными обитателями орга­низма человека, они могут находиться на коже и слизистых оболочках, в кишечнике, вызывая различные формы инфек­ционного процесса у ослабленных пациентов, детей раннего возраста или пожилых людей.

К таким возбудителям относят стафилококки, стрептокок­ки, синегнойную палочку, протей, клебсиеллы, кишечную па­лочку, сальмонеллы, энтеробактерии, энтерококки, серрации, клостридии, кандида и другие микроорганизмы. ВБИ могут вызывать редкие или малоизвестные возбудители, например, легионеллы и пневмоцисты.

ВБИ могут быть экзогенного и эндогенного происхожде­ния. Многообразие этиологических агентов ВБИ отражено в табл. 1.1.

Применительно к микроорганизмам - возбудителям ВБИ часто употребляют термин "госпитальный штамм", который вызывает в стационаре эпидемический процесс и отличается рядом характерных признаков, в числе которых множествен­ная лекарственная устойчивость, селективные преимущества для существования в условиях стационара, а именно: высокая устойчивость к воздействию неблагоприятных факторов внешней среды (ультрафиолетовое облучение, высушивание, действие дезинфицирующих препаратов), фагорезистентность. Важной отличительной чертой "госпитальных штаммов" явля­ется формирование множественной устойчивости к антибак­териальным препаратам, обычно применяемым в том или ином стационаре, а также наличие у этих штаммов неприхот­ливости к условиям среды обитания. Так, например, псевдо­монады и клебсиеллы могут бурно размножаться во влажной среде — в ингаляторах, жидких лекарственных формах, на по­верхности умывальных раковин, кранах, во влажном убороч­ном материале.

Источник возбудителя ВБИ. Источниками ВБИи могут быть сами больные, поступающие в период инкубации болезни (корь, ветряная оспа, эпидемиче­ский паротит и др.) или при нераспознанном неправильно ди­агностированном заболевании. Существенная категория ис­точников — бактерионосители сальмонелл, стафилококков, пневмоцист, клебсиелл. Определенную опасность представля­ют матери (носители возбудителей или нераспознанные боль­ные легкими атипичными формами) в акушерских стациона­рах и отделениях для детей раннего возраста.

Источником инфекции могут быть представители меди­цинского персонала при наличии у них нераспознанной бо­лезни, а также носительства патогенных или условно-патоген­ных возбудителей. Так, в родильных домах и домах ребенка практически здоровые медицинские работники — носители пневмоцист оказывались источником инфекции для детей. В связи с большой продолжительностью инкубации (до 30— 45 дней) при заболеваниях детей, возникавших после выписки из родильного дома, не всегда учитывалась связь их с пребы­ванием в стационаре. Механизмы, пути и факторы передачи возбудителя ВБИ Механизмы, пути и факторы передачи возбудителя ВБИ. множественны и разнообразны. В ЛПУ могут реализоваться как искусственный (артифициальный), так и естественные механизмы передачи возбудителя: аспирационный, фекально-оральный, контактный, вертикаль­ный.

Трансмиссивный механизм передачи инфекции в ЛПУ не имеет существенного значения, так как для его реализации должны быть кровососущие членистоногие переносчики воз­будителя. Однако возможность его реализации не исключена. Так, в конце 90-х годов XX столетия была зарегистрирована вспышка сыпного тифа в психиатрической больнице Липец­кой области в условиях высокой распространенности педику­леза среди пациентов.

Среди естественных механизмов передачи возбудителя наи­более легко может реализоваться аспирационный. Этому спо­собствуют высокая плотность пациентов в стационарах, нали­чие конвекционных токов воздуха, которые в короткий срок перемещают аэрозоль, содержащий возбудитель, по коридо­рам и лестничным клеткам, что обусловливает быстрое рас­пространение в стационарах таких инфекций, как грипп, ОРВИ, корь, краснуха и др. Определенную роль в распростра­нении возбудителя воздушно-капельным путем играет общая система вентиляции, а использование кондиционеров для подачи и увлажнения воздуха в стационарах может привести к возникновению вспышек внутрибольничного легионеллеза у пациентов.

В условиях ЛПУ возможно осуществление и воздушно-пы­левого пути передачи возбудителя ВБИ. Например, фактора­ми передачи стафилококков могут быть постельные принад­лежности — матрацы, одеяла, подушки.

Контактно-бытовой путь передачи через руки медицинско­го персонала, белье, предметы ухода за больными, медицин­ский инструментарий и аппаратуру представляет опасность для распространения псевдомонад и клебсиелл, например, в ожоговых и детских отделениях больниц.

Пищевой путь передачи возбудителя реализуется при нару­шениях работы пищеблока, технологии приготовления или хранения пищевых продуктов и готовых блюд и наличии не­распознанных источников инфекции среди работников пище­блока. Так могут возникать вспышки кишечных инфекций в стационаре.

Парентеральная передача возбудителя возможна при ис­пользовании необеззараженных шприцев и игл, введении ин­фицированных препаратов крови (ВГ, инфекция ВИЧ, стафи­лококки, малярия и др.). В целом, как правило, пути и факто­ры передачи возбудителя оказываются многообразными при нарушении режима стерилизации и дезинфекции медицин­ского инструментария, приборов и аппаратов, невыполнении персоналом правил асептики, антисептики, личной гигиены, режима уборки и дезинфекции.

Восприимчивость и контингента повышенного риска заболе­вания ВБИ.

Особенностью внутрибольничной инфекции яв­ляется то, что она поражает лишь определенные контингенты больных. Вероятность развития инфекционного заболевания у пациентов в условиях ЛПУ зависит от многих факторов: свойств возбудителя ("госпитальный штамм"), величины зара­жающей дозы, а также состояния общего и местного иммуни­тета, т. е. восприимчивости. Основные факторы, влияющие на восприимчивость к ВБИ, приведены на схеме 11.3. В хирурги­ческих отделениях к контингентам повышенного риска отно­сят детей раннего возраста и пожилых лиц, в терапевтических стационарах — больных сахарным диабетом, пациентов, дли­тельно получающих антибиотики, и др., в родовспомогатель­ных учреждениях — недоношенных новорожденных, ново­рожденных с дефицитом массы тела при рождении. Факторы риска заболевания ВБИ, действующие в стационарах разного профиля, и наиболее часто регистрируемые при этих факторах возбудители.

К контингентам повышенного риска заболевания ВБИ от­носят и медицинский персонал. В число профессиональных заболеваний медицинских ра­ботников, имеющих контакт с кровью больных, входят вирусные гепатиты В, С, -Д, ВИЧ-инфекция. Наибольший риск за­ражения парентеральными гепатитами имеют медицинский персонал отделений гемодиализа, работники клинических ла­бораторий, хирурги, стоматологи, реаниматологи. Наиболь­ший риск инфицирования медиков связан с первыми пятью годами медицинской практики, когда навыки безопасной ра­боты не являются устоявшимся стереотипом.

Проявления эпидемического процесса. Эпидемический про­цесс ВБИ проявляется как спорадической, так и эпидемиче­ской заболеваемостью.

Согласно статистическим данным, в РФ число вспышек и количество пострадавших в результате ВБИ сохраняются на высоком уровне, что связано, как правило, с нарушением санитарно-противоэпидемического режима в ЛПУ.

Показатели заболеваемости ВБИ существенно варьируют в стационарах разного профиля. Наибольший уровень заболе­ваемости ВБИ характерен для отделений реанимации и ин­тенсивной терапии (до 20 % госпитализированных больных поражаются ВБИ), высок этот показатель и в детских хирур­гических стационарах, а также хирургических отделениях для взрослых. Одно из первых мест по уровню регистрации ВБИ занимают родовспомогательные учреждения, что отражает среди прочих факторов более пристальное внимание к здоро­вью родильниц и новорожденных.

Проявления эпидемического процесса ВБИ в разных ста­ционарах зависят от ведущих этиологических агентов, профи­ля стационара, объема проводимых лечебно-диагностических процедур. Отличительной особенностью эпидемического про­цесса ВБИ является его автономное развитие с формировани­ем стойких (длительных) внутрибольничных вспышек (напри­мер, сальмонеллез).

Профилактические и противоэпидемические мероприятия проводят во всех подразделениях ЛПУ, начиная с приемного отделения. Задачей персонала приемного отделения является выявление источника возбудителя инфекции с целью предот­вращения заноса и последующего распространения в ЛПУ инфекционной болезни. Для этого в приемном отделении одномоментно принимают только одного больного, проводят осмотр пациента (в том числе на педикулез), сбор эпидемио­логического анамнеза, санитарную обработку. Важным меро­приятием является медицинская сортировка больных при приеме и разграничение потоков пациентов (например, посту­пающих в хирургическое отделение — "чистое" и "гнойное").

После осмотра каждого поступающего больного клеенку на кушетке следует протирать дезинфицирующим раствором. Ру­ки после осмотра больного необходимо вымыть мылом при двукратном намыливании с хорошим пенообразованием, а по­сле осмотра инфекционного больного — в течение 2 мин с использованием кожного антисептика. Приемное отделение должно иметь средства дезинфекции и дезинсекции, мыло, мочалки индивидуального пользования, посуду для хранения "чистых" и бывших в употреблении мочалок, наконечники для клизм и посуду для их хранения в чистом виде.

В лечебных отделениях стационаров осуществляют актив­ное выявление инфекционных больных и их изоляцию, а так­же текущую и заключительную дезинфекцию. Инфекционно­го больного переводят в отдельную палату (изолятор), а затем в инфекционную больницу, пациенты с гнойно-септическими инфекциями должны быть переведены в специализированное отделение гнойной хирургии.

Особое внимание уделяют постоянно­му проведению профилактической дезинфекции, т. е. устра­нению путей и факторов передачи возбудителей ВБИ, предот­вращению циркуляции "госпитальных штаммов" в лечебном учреждении. С этой целью в лечебных отделениях с примене­нием дезинфицирующих растворов протирают поверхности и предметы обстановки (кровати, тумбочки, подставки для под­кладного судна и др.). Постельные принадлежности после вы­писки каждого больного должны обрабатываться в дезинфек­ционной камере (по режиму для уничтожения вегетативных форм микроорганизмов). Гигиеническую ванну больные полу­чают 1 раз в 7—10 дней со сменой белья. При смене постель­ного и нательного белья его аккуратно укладывают в емкости с крышкой или мешки из хлопчатобумажной ткани. После смены белья пол и предметы протирают дезинфицирующими растворами. Весь уборочный инвентарь: щетки, тряпки, вед­ра — должен быть маркирован для разных помещений. Убо­рочный материал обеззараживают замачиванием на 1ч в 3 %

растворе хлорамина с последующим полосканием в чистой воде и высушиванием, так как во влажной ветоши размножа­ются псевдомонады и клебсиеллы. В плановом порядке 1 раз в месяц и, кроме того, по показаниям проводят бактериологи­ческие исследования воздуха, жидких лекарственных форм, грудного молока, жидкостей для питья больных, смывов с рук персонала, предметов ухода.

В ЛПУ постоянно осуществляют бактериологический кон­троль стерильности хирургического инструментария, игл, шприцев, шовного материала, катетеров, аппаратов для ис­кусственного кровообращения, эндоскопической аппаратуры.

В соответствии с приказом Минздрава введена должность госпитального эпидемиолога, а в крупных больницах — за­местителя главного врача по санитарно-эпидемиологическим вопросам, в больницах организованы комиссии по профилак­тике ВБИ. В центрах ГЦСЭН работают отделения (группы) по контролю за ВБИ, основная задача которых — методическое руководство работой по профилактике ВБИ, лицензирование ЛПУ, анализ эпидемиологической ситуации, складывающейся в отношении ВБИ в различных ЛПУ, участие в расследовании вспышек ВБИ.

Важным направлением в профилактике ВБИ является из­менение соотношения добольничной и больничной помощи в сторону превалирования добольничной помощи, проведение диагностических исследований в специализированных цен­трах, сокращение масштабов госпитализации, в частности, за счет больных острыми кишечными инфекциями, гепатитом А и другими инфекциями, а также сокращение времени пребы­вания в стационаре.

Эпидемиологический надзор за ВБИ — это система монито­ринга за динамикой эпидемического процесса ВБИ (заболе­ваемость, носительство, летальность), факторами и условия­ми, влияющими на их распространение, анализ и обобщение полученной информации для разработки научно обоснован­ной системы мер борьбы и профилактики ВБИ. Целями эпидемиологического надзора являются составле­ние объективного заключения об эпидемиологической ситуа­ции по ВБИ в ЛПУ и его подразделениях и на этой основе определение научно обоснованных рекомендаций по контро­лю ВБИ. Выявление тенденции эпидемического процесса, из­менения этиологии ВБИ, действия факторов риска необходи­мы для оперативного внесения коррективов в сложившуюся систему мер борьбы и профилактики, что будет способство­вать оптимизации профилактических и противоэпидемиче­ских мероприятий.

В лечебно-профилактическом учреждении 1 раз в месяц следует проводить анализ заболеваемости внутрибольничными инфекциями и разрабатывать конкретные рекомендации по выполнению профилактических и противоэпидемических ме­роприятий.

При возникновении каждого случая ВБИ госпитальный эпидемиолог проводит эпидемиологическое расследование, а при тяжелых формах ВБИ (например, сепсис с летальным ис­ходом, остеомиелит) в эпидемиологическом обследовании принимают участие эпидемиолог ЦГСЭН, заведующий отде­лением и заместитель главного врача больницы. На каждое внутрибольничное заболевание заполняют "экстренное изве­щение", которое передают вФГУЗ «Центр гигиены и эпидемиоогии».

 

Дезинфекция, стерилизация - составные части противоэпидемической работы. Они направлены на уст­ранение путей и факторов передачи возбудителя, т. е. на вто­рое звено эпидемического процесса.

Дезинфекция и стерилизация медицинского инструментария

Медицинский инструментарий немедленно после работы с пациентом должен подвергаться дезинфекции. Некоторые изделия медицинского назначения, такие как зеркала (стомато­логические и ЛОР), после дезинфекции и отмывки от дезинфектанта готовы к последующему использованию, т. е. не тре­буют стерилизации.

Дезинфекцию инструментов осуществляют физическим или химическим методом. Среди физических методов наиболее распространенным является кипячение в воде в течение 30 мин, а с добавлением питьевой соды (20 г/л) в течение 15 мин. Однако чаще применяют химический метод дезин­секции при полном погружении инструментов в емкость с дезинфицирующим раствором.

Эту операцию проводят сразу после использования инструментов, не допуская их подсуши­вания. Разъемные изделия погружают в разобранном виде. Каналы изделий должны быть заполнены раствором без обра­зования воздушных пробок.

После окончания дезинфекции все инструменты промыва­ют проточной водой или отмывают методом погружения в ем­кости с водой, соблюдая минимальное время экспозиции и соотношение воды к объему, занимаемому изделиями (3:1). Все полости и каналы инструментария должны быть тщатель­но промыты от дезинфектанта, последние — с помощью шприца или водоструйного насоса.

Изделия медицинского назначения или части некоторых изделий, не соприкасающиеся непосредственно с пациентом, дезинфицируют методом протирания тампоном, смоченным в дезинфектанте.

Широкое использование химических средств дезинфекции требует проведения контроля качества дезинфектантов.

Контроль качества дезинфектантов состоит в определении содержания активнодействующего вещества с помощью лабо­раторных исследований или экспресс-методом.

С целью проведения лабораторного контроля проводят от­бор проб сухих дезинфицирующих средств и их растворов в соответствии с методикой и направляют для анализа в хими­ческую лабораторию.

Экспресс-метод контроля дезинфектантов позволяет в те­чение нескольких секунд определить концентрацию дейст­вующего вещества в растворе с помощью индикаторных бу­мажных полосок. Например, для хлорамина, хлорной извести разработан хлор-тест, для перекиси водорода — пероксид-тест, хлоргексидина биглюконата (гибитана) — ЧАС-тест, нейтрального анолита — миллихлор. При опускании индика­торной полоски в исследуемый раствор на 1сек. она меняет цвет в зависимости от концентрации активнодействующего веще­ства, которую определяют в процентах при сравнении инди­каторной полоски со шкалой цветности.

Стерилизация медицинская — полное освобождение веще­ства или предмета от микроорганизмов, т. е. уничтожение вегетативных и споровых патогенных и непатогенных форм путем воздействия на него физических или химических агентов.

Стерилизации подвергают все изделия медицинского на­значения, соприкасающиеся с раневой поверхностью, контак­тирующие с кровью или инъекционными препаратами, а так­же отдельные виды медицинских инструментов, которые в процессе эксплуатации соприкасаются со слизистой оболоч­кой и могут вызвать ее повреждение.

Обработка изделий, подлежащих стерилизации, включает три этапа: • дезинфекция, • предстерилизационная очистка,• стерилизация.

Первый этап — дезинфекция медицинских инструментов — описана в предыдущем разделе.

Второй этап обработки инст­рументов, подлежащих стерилизации, — предстерилизацион­ная очистка имеет целью удаление белковых, жировых, меха­ническихзагрязнений и остаточных количеств лекарственных препаратов. Предстерилизационную очистку осуществляют механизированным или ручным способами с использованием разрешенных моющих средств. Разъемные изделия подверга­ют предстерилизационной очистке в разобранном виде и с за­полнением каналов.Механизированную очистку проводят в моечных машинах специального назначения: для игл, шприцев, различных инст­рументов.

Ручным способом обработку проводят в следующей после­довательности:

- промывание изделия проточной водой в течение 0,5 мин;

- замачивание при полном погружении изделия на 15 мин при 50 °С в моющем растворе 0,5 % "Биолот" или 0,5 % растворе перекиси водорода с 0,5 % одного из синтети­ческих моющих средств (CMC): "Лотос", "Лотос-авто­мат", "Астра", "Айна", "Маричка", "Прогресс";

- мойка каждого изделия в том же моющем растворе с по­мощью ватно-марлевого тампона или ерша в течение 0,5 мин;

- ополаскивание проточной, а затем дистиллированной водой;

- сушка горячим воздухом при температуре 75—87°С в су­шильных шкафах до полного исчезновения влаги.

Известно, что перекись водорода вызывает коррозию инст­рументов из коррозионно-неустойчивых металлов, поэтому в моющий раствор целесообразно добавлять ингибитор корро­зии в концентрации 1,4 г/л.

Раствор "Биолот" для замачивания и мойки изделий при­меняют однократно, а моющий раствор перекиси водорода с СМС можно использовать в течение суток.

В настоящее время созданы средства, сочетающие дезин­фицирующие и моющие свойства и позволяющие проводить одновременно дезинфекцию и предстерилизационную очистку„ инструментов в один этап ("Лизетол АФ", "Септодор-Форте-"Деконекс Денталь ББ", "Дюльбак", Гротанат"). С этой же¹целью можно применять "нейтральные" анолиты, получаемые на диафрагменных электрохимических установках из раство­ров поваренной соли. Католиты, получаемые в катодных ка­мерах установок, обладают только моющими свойствами, их применяют для предстерилизационной очистки инструментов из любых материалов.

Контроль качества предстерилизационной обработки про­водят выборочно (1% изделий каждого наименования) путем постановки проб на остаточную кровь (азопирамовой пробы). Азопирам, кроме следов крови, выявляет наличие на изделиях остаточных количеств пероксидаз растительного происхождения, хлорамина, хлорной извести, стирального по­рошка с отбеливателем, а также ржавчины и кислот.

При положительной пробе на кровь, моющее средство или жир всю партию контролируемых изделий подвергают повтор­ной обработке до получения отрицательных результатов.

Третий этап.

Стерилизацию изделий медицинского назначения осущест­вляют следующими методами:

•термическим (паровые, воздушные, гласперленовые сте­рилизаторы);

•химическим (растворы химических веществ, газовая сте­рилизация);

•радиационным (установки с радиоактивным источником излучения).

В последнее время на основе принципиально новых техно­логий созданы плазменные стерилизаторы, использующие энергию воздействия потока активированных молекул инерт­ного газа, ускоренных в электрическом поле, на поверхность стерилизуемых объектов, а также озоновые стерилизаторы.

Оптимальный метод стерилизации определяют с учетом материала, из которого состоит обрабатываемое изделие, его конструктивного исполнения, необходимости длительного со­хранения стерильности и др.

В практике работы ЛПУ наиболее широко применяют тер­мический метод стерилизации с использованием паровых и воздушных стерилизаторов.

Паровой метод стерилизации. В паровых стерилизаторах обрабатывают хирургическое белье, перевязочный материал, хирургические инструменты, детали приборов и аппаратов из коррозиестойких материалов, стекла (в том числе шприцы с пометкой 200 °С), резины (катетеры, зонды, трубки, перчат­ки), текстильных материалов Стерилизующим агентом является насыщенный водяной пар под избыточным давлением. Температурный режим сте­рилизации в современных паровых стерилизаторах варьирует от 126 до 141°С, а время стерилизации соответственно от 3 до 10 мин. Эффективность стерилизации в паровом стерилизаторе за­висит от правильного выбора упаковки, соблюдения правил загрузки и плотности загрузки для свободного прохождения пара.

Воздушный метод стерилизации. В воздушных стерилизато­рах стерилизующим агентом является сухой горячий воздух, при этом не происходит увлажнения упаковки и изделий и не наблюдается коррозия коррозионно-неустойчивых металлов, не осложняются условия сохранения стерильности. Однако по эффективности воздействия на микроорганизмы он уступает пару, и для обеспечения стерилизации требуются более высо­кие температуры. Режимы стерилизации воздушным методом в стерилизаторах нового поколения характеризуются темпера­турой от 160 до 200°С и временем стерилизации от 30 до 120 мин. Воздушным методом стерилизуют хирургические и гинеко­логические инструменты, детали и узлы приборов и аппара­тов, в том числе изготовленных из коррозионно-неустойчи­вых материалов, инъекционные иглы, шприцы с пометкой 200 °С и др.

Газовый метод стерилизации. Стерилизацию в газовых сте­рилизаторах осуществляют при невысоких температурах (18— 80 °С) с применением оксида этилена, смеси ОБ (смесь окси­да этилена и бромистого метила в весовом соотношении 1:2,5), а также паров раствора формалина в этиловом спирте. Изделия стерилизуют в упаковке из полиэтиленовой пленки, пергамента или бумаги оберточной марки. Газовую стерилиза­цию в качестве "холодного" метода используют для термола­бильных изделий медицинского назначения из полимерных материалов (резины, пластмассы), колющих, режущих хирур­гических инструментов, имеющих зеркальные поверхности, оптического оборудования (эндоскопы), кардиостимуляторов, предметов одноразового пользования.

Срок хранения изделий, стерилизованных газовым мето­дом в полиэтиленовой пленке,- годы, в остальных упаков­ках - 20 суток.

Метод стерилизации с помощью растворов химических средств. Для стерилизации рекомендованы растворы: анолит нейтральный, "Бианол", Гигасепт ФФ", глутаровый альдегид, Дюльбак растворимый", "Колдспор", "Лизоформин 300", Первомур" (4,8 %), перекись водорода (6 %), "Сайдекс".

В растворах химических веществ обрабатывают инструмен­ты из коррозиестойких материалов, изделия из стекла, пласт­масс, металла (сплавы титана), резины на основе силиконового каучука, в том числе эндоскопы. Лигатурный шовный ма­териал может быть стерилизован первомуром в концентрации 4,8 % в отличие от первомура для обработки рук (2,4 %).

Гласперленовые стерилизаторы используют для стерилиза­ции мелких стоматологических инструментов. В качестве сте­рилизующей среды — нагретые стеклянные шарики.

Радиационный метод стерилизации — ведущий метод про­мышленной стерилизации на предприятиях, выпускающих стерильные изделия медицинского назначения однократного применения: пластмассовые зонды, катетеры, трубки, систе­мы для взятия и переливания крови, акушерские комплекты, перевязочный материал.

Стерилизующим агентом являются ионизирующие гамма-и бета-излучения. Энергия используемых для стерилизации излучений не вызывает наведенной радиации у стерилизуемых изделий. Срок сохранения стерильности в индивидуальной упаковке из полиэтиленовой пленки исчисляется годами, но ограничивается сроком годности изделия к использованию и указывается на упаковке.

Контроль стерилизации проводят с помощью физического и химического методов.

Физический метод контроля работы стерилизаторов осуще­ствляют с помощью контрольно-измерительных приборов, фиксирующих температуру, давление и время.

Химический метод состоит в использовании химических тестов и термохимических индикаторов, которые размещают в стерилизационной камере в контрольных точках прикаждой закладке инструментов и материалов как вне упаковок, так и в стерилизационные коробки (биксы) и внутри упаковок. При обнаружении неудовлетворительных результатов контроля за­грузку считают нестерильной.

Эффективность стерилизации контролируют бактериологи­ческим методом, используя биотесты стерилизации, представ­ляющие собой объекты (флаконы, фольгу и др.), обсеменен­ные тест-микроорганизмами, например спорами B.stearother-mophilus или В. licheniformis. На основании гибели тест-мик­роорганизмов делают заключение об эффективности про­цесса.

Контроль стерильности заключается в определении на из­делиях, подвергнутых стерилизации, тест-микроорганизмов, способных к размножению.

Дезинфекционный режим в лечебно-профилактических учреждениях. Дезинфекционные мероприятия в ЛПУ занимают главенст­вующее место в комплексе профилактических и противоэпи­демических мероприятий и направлены на предупреждение возникновения, ограничение распространения и ликвидацию внутрибольничной инфекции (ВБИ).

Объем и вид проводимой в ЛПУ дезинфекции определяют профиль стационара, наличие больных с инфекционными за­болеваниями и показатель заболеваемости ВБИ. В стациона­рах постоянно осуществляют профилактическую, а по показа­ниям — очаговую (текущую и заключительную) дезинфекцию.

Особенностью этой работы является то, что она выполня­ется в присутствии больных и при непрерываемой деятельно­сти медицинского и обслуживающего персонала, что опреде­ляет выбор средств и методов дезинфекции. Конкретный план дезинфекционных мероприятий в ЛПУ составляют с учетом наиболее значимых в качестве факторов передачи объектов внешней среды, наиболее часто и массивно обсемененных па­тогенными и условно-патогенными микроорганизмами- возбудителями ВБИ. Ответственность за организацию и проведение комплекса санитарно-гигиенических и противоэпидемических мероприя­тий возложена на главного врача лечебно-профилактического учреждения. Старшая медицинская сестра ответственна за обучение среднего и младшего персонала.

Наиболее значимым фактором передачи возбудителя инфекционных болезней в условиях ЛПУ являются руки медицинского пер­сонала, что обосновывает необходимость систематической их обработки. Различают гигиеническую и хирургическую обра­ботку рук медицинского персонала.

Гигиеническая обработка рук предусматривает удаление или уничтожение транзиторной (поверхностной) патогенной или условно-патогенной микрофлоры для предупреждения рас­пространения ее на окружающие объекты и пациентов. Гигие­ническую обработку обязан проводить весь персонал регуляр­но, используя один из следующих способов:

• тщательное мытье рук туалетным или хозяйственным мылом при двукратном намыливании их с последую­щим, вытиранием стерильной салфеткой;

• тщательное мытье рук антисептическими мылами в те­чение 30сек. с последующим смыванием пены;

• протирание рук в течение 1—2 мин тампоном, смочен­ным в одном из дезинфицирующих растворов (70 % этиловом спирте, 0,5 % хлоргексидине биглюконате в 70 % этиловом спирте);

• нанесение на поверхности ладоней 3 мл одного из кож­ных антисептических препаратов и втирание в кожу в течение 30 с ("АХД-2000-специаль", "Октенидерм", "Октениман", "Сагросепт", "Спитадерм", "Велтосепт" и др.).

Способ обработки определяют выполняемая работа и воз­можность контаминации рук условно-патогенными и патогенными микроорганизмами. После манипуляций, связанных с возможностью попадания на руки патогенной микрофлоры, обязательно применяют дезинфицирующие средства, включая те случаи, когда персонал работает в перчатках.

Хирургическая дезинфекция рук обязательна для персонала, участвующего в операции, и проводится после предваритель­ного мытья рук с мылом в течение 1 мин при двукратном на­мыливании. Антисептик наносят на вытертые насухо стериль­ной салфеткой руки Для хирургической обработки рук используют рецептуру С-4, 0,5 % хлоргексидин биглюконат в 70 % этиловом спирте, "Велтосепт", 1 % дегмицид и др.

В приемном отделении (прием больного- вторая наиболее значимая группа факторов риска) после осмотра больного: использованные термометры полностью погружают в 2 % раствор хлорамина на 5 мин, затем промывают проточной водой, хранят в промаркированной емкости в сухом виде; дезинфи­цирующим раствором промывают клеенку, покрывающую ку­шетку. Всех больных осматривают на педикулез. В специаль­ном помещении проводят полную санитарную обработку по­ступающих больных.

В лечебных отделениях перед поступлением больного (третья группа факторов риска) обра­батывают дезинфицирующим раствором кровать, тумбочку, подставку для подкладного судна. Постельные принадлежно­сти дезинфицируют в паровой камере или паровоздушным способом; палаты проветривают 4 раза в день. Ванну для больных и смену постельного и нательного белья назначают 1 раз в 7—10 дней.

В процедурном кабинете стерильный стол накрывают на срок 6 ч. Во время работы корнцанги и пинцеты для стериль­ного материала хранят в дезинфицирующем растворе (1 % водный раствор хлоргексидина биглюконата, 1 % раствор хлорамина).

Инъекционное поле двукратно протирают ватными шари­ками, смоченными 70 % спиртом или другим предназначен­ным для этих целей антисептиком.

Инъекционные иглы и шприцы после использования по­мещают в емкости с дезинфицирующим раствором, промывая их перед погружением и заполняя дезинфицирующим раство­ром. Шприцы однократного применения после дезинфекции направляют на утилизацию.

Смену спецодежды проводят не реже 2 раз в неделю. Теку­щую уборку выполняют 2 раза в день влажным способом с применением дезинфицирующих средств. Для бактерицидно­го облучения помещений используют комбинированные или рециркуляционные лампы, которые включают после уборки в конце рабочего дня на 30 мин. Генеральную уборку проводят 1 раз в неделю.

В операционном блоке стерильные инструменты и материал, необходимые для операции, выкладывают на стерильный стол перед началом операции. Для шитья используют только сте­рильный ампулированный шелк, капрон или кетгут. Кожу па­циента обрабатывают кожным антисептиком, для изоляции операционного поля применяют стерильные простыни и пе­ленки. Использованные инструменты и материал собирают в специально выделенную емкость и выносят из операционной.

Текущую уборку операционного блока проводят не реже 2 раз в день с применением дезинфектантов и УФ-облучения, а генеральную уборку — 1 раз в неделю 6 % раствором переки­си водорода и 0,5 % моющим средством, затем дополняют УФ-обработкой.

В "чистых" зонах стационаров (операционных блоках, бок­сах для гематологических больных и т. д.) проводят очистку и дезинфекцию воздуха с использованием специализированных фильтров тонкой очистки воздуха (типа НЕРА), установок ла­минированных потоков воздуха, рециркуляторов, принцип действия которых основан на принудительном покачивании воздуха через аппарат, в котором размещены УФ-лампы.

В палатах для больных анаэробной инфекцией устанавлива­ют потолочные и настенные бактерицидные облучатели. Па­латы обрабатывают 2 раза в день 6 % раствором перекиси во­дорода с 0,5 % моющим средством.

В профильных отделениях для больных гнойными хирургиче­скими заболеваниями в приемном отделении после осмотра больного персоналу следует обрабатывать руки 70 % этиловым спиртом или 0,5 % раствором хлоргексидина биглюконата в 70 % этиловом спирте (5—8 мл раствора наливают на ладони и втирают в течение 2 мин), перчатки сбрасывают в емкость с дезинфицирующим раствором. Персоналу выдают индивиду­альные полотенца на 1 день.

В отделении уборку проводят 2 раза в день мыльно-содо­вым раствором, палаты оборудуют бактерицидными УФ-облучателями закрытого типа. При перевязках больного врач и ме­дицинская сестра используют клеенчатые фартуки, которые протирают ветошью, смоченной дезинфицирующим раство­ром (1 % раствором хлорамина, 0,75 % ПВК и др.). В инфекционном отделениивыделения больного (рвотные массы, испражнения) обеззараживают сухой хлорной изве­стью, нейтральным гипохлоритом кальция, гипохлоритом кальция техническим из расчета 1:5 в течение 2 ч. После уда­ления выделений емкости обеззараживают при их полном по­гружении в дезраствор. Термометры после использования це­ликом погружают в емкость с 2 % раствором хлорамина на 5 мин, затем промывают.

На пищеблоке соблюдают требования по режиму предпри­ятий общественного питания. Персонал сдает зачет по санитарному минимуму. Посуду обрабатывают в моечных буфетов лечебных отделений.

Текущую уборку операционного блока проводят не реже 2 раз в день с применением дезинфектантов и УФ-облучения, а генеральную уборку — 1 раз в неделю 6 % раствором переки­си водорода и 0,5 % моющим средством, затем дополняют УФ-обработкой.

В "чистых" зонах стационаров (операционных блоках, бок­сах для гематологических больных и т. д.) проводят очистку и дезинфекцию воздуха с использованием специализированных фильтров тонкой очистки воздуха (типа НЕРА), установок ла­минированных потоков воздуха, рециркуляторов, принцип действия которых основан на принудительном покачивании воздуха через аппарат, в котором размещены УФ-лампы.

В палатах для больных анаэробной инфекцией устанавлива­ют потолочные и настенные бактерицидные облучатели. Па­латы обрабатывают 2 раза в день 6 % раствором перекиси во­дорода с 0,5 % моющим средством.

В профильных отделениях для больных гнойными хирургиче­скими заболеваниями в приемном отделении после осмотра больного персоналу следует обрабатывать руки 70 % этиловым спиртом или 0,5 % раствором хлоргексидина биглюконата в 70 % этиловом спирте (5—8 мл раствора наливают на ладони и втирают в течение 2 мин), перчатки сбрасывают в емкость с дезинфицирующим раствором.

Персоналу выдают индивиду­альные полотенца на 1 день.

В отделении уборку проводят 2 раза в день мыльно-содо­вым раствором, палаты оборудуют бактерицидными УФ-облучателями закрытого типа. При перевязках больного врач и ме­дицинская сестра используют клеенчатые фартуки, которые протирают ветошью, смоченной дезинфицирующим раство­ром (1 % раствором хлорамина, 0,75 % ПВК и др.).

В инфекционном отделении выделения больного (рвотные массы, испражнения) обеззараживают сухой хлорной изве­стью, нейтральным гипохлоритом кальция, гипохлоритом кальция техническим из расчета 1:5 в течение 2 ч. После уда­ления выделений емкости обеззараживают при их полном по­гружении в дезраствор. Термометры после использования це­ликом погружают в емкость с 2 % раствором хлорамина на 5 мин, затем промывают.

На пищеблоке соблюдают требования по режиму предпри­ятий общественного питания. Персонал сдает зачет по санитарному минимуму. Посуду обрабатывают в моечных буфетов лечебных отделений. Для этого предназначены баки для зама­чивания и кипячения посуды, моющие и дезинфицирующие средства и маркированный уборочный инвентарь. Посуду сле­дует кипятить в течение 15 мин или в течение 30 мин замачи­вать в одном из растворов: 0,5 % хлорамин, 0,1 % сульфохлорантин, 1 % дихлор-1, 0,05 % дезоксон-1 с последующим мыть­ем. Уборочный инвентарь маркируют и используют только по назначению.

Задание на дом

· Подготовка к зачету

· Оформление тетради для самостоятельной работы