Методика проведения диспенсеризации по внутренним незаразным болезням животных

ИНСТРУКЦИОННАЯ КАРТА НА ВЫПОЛНЕНИЕ УЧЕБНОЙ ПРАКТИКИ ПРОФЕССИОНАЛЬНОГО МОДУЛЯ (ПМ01)

«Осуществление зоогигиенических, профилактических и ветеринарно-санитарных мероприятий»

Тема: Участие в проведении диспансеризации животных (ПК 1.1; ПК 1.2; ПК 1.3.)

Норма времени: 6 часов

Цель работы: Изучить материал по диспансеризации животных

Контрольные вопросы:

1.Определение диспансеризации животных

2. Методика проведения диспансеризации по внутренним незаразным болезням животных

3.Классификация диспансеризации

4.Этапы диспансеризации

5.Исследования при диспансеризации

Теоретические инструкции.

Определение диспансеризации животных

Диспансеризация - система плановых диагностических, про­филактических и лечебных мероприятий, направленных на создание здоровых высокопродуктивных стад животных, уменьшение и ликвидацию внутренних незаразных, акушерско-гинекологических, хирургических и других болезней.

Диспансеризация позволя­ет осуществлять контроль за состоянием обмена веществ у животных в целом по стаду, своевременно выявлять субклинические формы болезней, разобраться в сложном комп­лексе причин, вызывающих их, намечать пути профилактики и лечения.

Результаты диспансеризации позволяют активно влиять на технологию животноводства, совместно с агрономической, зоотехнической и другими службами участвовать в создании биологически полноценной кормовой базы, отвечающей осо­бенностям обмена веществ и уровню стабильной высоко продуктивности животных - необходимого условия научно-технического прогресса в животноводстве и ветеринарии.

Диспансеризацию животных проводят ветеринарные спе­циалисты хозяйств с участием зоотехников, агрономов, управляющих, начальников цехов, бригадиров ферм.

Лабора­торные исследования крови, рубцового содержимого и других биологических субстратов осуществляют ветеринарные лабо­ратории.

Химический состав кормов определяют агрохимла­боратории, качество кормов - ветлаборатории.

Методика проведения диспенсеризации по внутренним незаразным болезням животных

2.1. Принцип метода

В основу методики диспансеризации животных при внутренних незаразных болезнях, включая алиментарные и эндокринные болезни, положены принципы выборочной совокупности и непрерывности. Первый дости­гается путем обследования контрольных ферм (дворов, сек­ций) и контрольных групп животных,

второй - благодаря проведению основной, наиболее полной, и промежуточной (текущей) диспансеризации без значительного увеличения общего объема исследований.

2.2. Контрольные дворы (фермы, секции)

определяют главный ветеринарный врач и главный зоотехник хозяйства, где должны быть такие же условия кормления и содержания животных, как и на смежных дворах (фермах).

2.3. Контрольные группы животных

подбирают ветеринарные специалисты, которые проводят диспансеризацию с учетом возраста и физиологического состояния.

При диспансеризации молочных коров и нетелей выделя­ют четыре контрольных группы:

1) коровы в первые три ме­сяца лактации;

2) коровы 6-7 месяцев лактации;

3) сухо­стойные животные;

4) нетели за 2 - 3 месяца до отела.

На промышленных комплексах по интенсивному выращи­ванию и откорму бычков контрольными группами служа животные первого, второго и третьего периодов выращивания и откорма.

При диспансеризации свиней контрольными группами являются супоросные свиноматки, холостые свиноматки и хряки-производители.

При диспансеризации овец группами контроля являются суягные овцематки, подсосные овцематки, бараны-производители.

На племенных фермах, конезаводах и ипподромах диспансеризуют жеребых кобыл, подсосных конематок, жеребцов-производителей, жеребят в возрасте 6, 12, 24, 36 месяцев.

На станциях, племобъединениях и других животноводческих фермах при небольшом поголовье диспансеризуют всех животных, при большом – выделяют контрольные группы по возрастному принципу.

Необходимость такого принципа отбора контрольных групп животных вызвана тем, что клинико-биохимические показатели зависят от физиологического состояния периода выращивания и откорма.

При очередной диспансеризации контрольные группы жив­отных подбирают вновь.

2.4. Сроки проведения диспансеризации

Диспан­серизацию делят на основную и текущую.

Основную прово­дят раз в год (январь - февраль), текущую - раз в квартал.

Основная диспансеризация включает:

- анализ производственных показателей по животноводству и ветеринарии;

- вете­ринарный осмотр животных;

- клиническое обследование конт­рольных групп;

- исследование крови, мочи, молока;

- анализ кормления и содержания скота;

- анализ полученных данных;

- заключение и предложения;

- мероприятия по профилактике и лечению.

При текущей (промежуточной) диспансеризации проводят:

- ветеринарный осмотр всех животных;

- исследуют мочу и мо­локо от контрольных групп (кровь - по усмотрению врача);

- анализируют рационы, полученные данные;

- дают заключение и предложения;

- намечают мероприятия по профилактике.

На крупных фермах проводят полное клиническое обсле­дование 10-20% поголовья коров и нетелей, исследование мочи - у 10-20%, крови - 5%, молока тех коров, у кото­рых в моче обнаружены ацетоновые тела.

Выделяют три основных этапа проведения диспансеризации:

- диагностичекий;

- профилактический;

- лечебный.

В диагностическом этапе проводят:

2.5. Анализ производственных показателей по животноводству и ветеринарии (синдроматика стада)

Анализируют молочную продуктивность, затраты коров на единицу продукции, заболеваемость скота незаразными и за­разными болезнями, выход телят на 100 коров, их потери (падеж, вынужденный убой, мертворожденность), учитывают массу новорожденных телят, степень выбраковки коров и др.

Анализ этих показателей следует проводить в динамике, за ряд предыдущих лет. Он дает представление об общем со­стоянии фермы, стада, наиболее вероятной причине нарушения обмена веществ и других болезней животных.

2.6. Ветеринарный осмотр животных

При проведении основной и промежуточных диспансеризаций на контроль­ных фермах (дворах, секциях) проводят ветеринарный ос­мотр всех животных.

При поголовном осмотре обращают внимание на общее состояние, упитанность, состояние шерстного покрова, венчи­ка, копытного рога и костяка, реакцию при вставании и т. д.

Хорошее общее состояние, живая быстрая реакция на оклик, блестящий шерстный покров, средняя упитанность характер­ны для здоровых животных.

Матовость шерстного покрова и глазури копытного рога, заломы рогового башмака, дистро­фия или ожирение, болезненность при вставании, движении, хруст в суставах, провислость спины и слабость костяка являются свидетельством патологии обмена веществ у жи­вотных.

2.7. Клиническое обследование контрольных групп живот­ных

Для того чтобы иметь представление о клиническом статусе в стаде при проведении основной диспансеризации, осуществляют полное клиническое обследование контроль­ных групп животных.

Определяют упитанность, состояние лимфоузлов, частоту сердечных сокращений, характер сердеч­ных тонов, частоту и глубину дыхания, ритм и силу сокраще­ния рубца, состояние печени, костяка, органов движения, вымени и мочеполовых органов.

Исследуют предлопаточные лимфоузлы и лимфоузлы коленной складки. При их увеличе­нии животных исследуют на лейкоз в соответствии с сущест­вующей инструкцией.

Состояние сердечной деятельности определяют путем аускультации сердца, устанавливая частоту, силу и ритм сердеч­ных сокращений, усиление, ослабление сердечных тонов, рас­щепление или раздвоение их, шумы сердца и др. При кетозе отмечают преимущественно учащение сердечных сокращений, ослабление, глухость, расщепление, раздвоение сердечных тонов.

Состояние органов дыхания оценивают первоначально по частоте и глубине дыхания, при наличии каких-либо призна­ков патологии проводят дополнительные исследования. Час­тоту дыхания подсчитывают при спокойном состоянии живот­ного. Наличие большого числа животных с учащенным по­верхностным дыханием свидетельствует о патологии обмена, веществ. На фермах, где отмечают кетоз, хронический ацидоз рубца, учащенное поверхностное дыхание бывает у 20 - 25% животных. У высокопродуктивных коров нередко констатируют хро­нические бронхиты, очаговые пневмонии, альвеолярную эмфи­зему легких и другие болезни органов дыхания.

Первоначальное представление о состоянии желудочно-кишечного тракта дают результаты исследования рубца. Ча­стоту движений рубца подсчитывают за 2 мин. При установ­лении редких или частых слабых, неритмичных сокращений рубца исследуют книжку, сычуг, сетку, чтобы выявить пер­вичную причину гипотонии, атонии или гипертонии преджелудков. Важно исключить травматический ретикулит, ретикулоперитонит, закупорки книжки и другие первичные забо­левания преджелудков. Частые случаи гипотонии и атонии преджелудков у коров встречаются при ацидозе рубца, остеодистрофии и гипокобальтозе. Нередко они проявляются при кетозе, а также рез­ком переводе животных с одного вида корма на другой.

Печень животного исследуют пальпацией и перкуссией области печеночного притупления. При значительных патоло­гических процессах в печени область ее притупления увели­чивается в каудальном направлении, доходя до линии седа­лищного бугра до 13-го ребра, и опускается краниовентрально. Увеличение печени встречается преимущественно у живот­ных при высококонцентратном, силосно-бардяном, силосно-жомовом типах кормления.

Для оценки состояния костяка исследуют последние хво­стовые позвонки, ребра, поперечные отростки поясничных позвонков и других костей. В случаях расстройства мине­рального обмена, обеднения костяка солями кальция, фос­фора, магния у животных обнаруживают истончение и расса­сывание последних хвостовых позвонков, ребер, лопатки и других костей. На ребрах, маклоке и других костях устанав­ливают фиброзные утолщения, иногда величиной с кулак, деформацию грудной клетки.

При исследовании органов движения обращают внима­ние на наличие хромоты, состояние суставов, венчика, копы­тец. Частые случаи деформации копытцевого рога, воспале­ния венчика, бурситов, артритов могут быть следствием на­рушения обмена веществ у животных.

При исследовании мочеполовых органов осматривают область подгрудка, нижнюю часть живота и другие участки тела животного с тем, чтобы выявить отеки, определяют чувствительность почек.

Осматривают область таза, крупа и вульвы с целью обнаружения истечений из наружных поло­вых органов и установления вагинитов, эндометритов, метри­тов, задержаний последа и других болезней.

Клинические формы маститов выявляют осмотром и паль­пацией молочной железы, обнаружением хлопьев и сгустков в молоке (секрете) при пробном сдаивании на фильтроваль­ную бумагу.

Результаты клинического исследования записывают в специальный журнал или диспансерную карту.

2.8. Исследования крови, мочи, молока, рубцового содер­жимого Для того чтобы иметь наиболее полное представле­ние об уровне и состоянии обмена веществ, необходимо про­вести лабораторные исследования крови, мочи и молока, а в ряде случаев и рубцового содержимого.

2.8.1. Исследование крови

При основной и промежуточ­ной диспансеризации перед взятием крови проводят полное клиническое обследование животных. Кровь берут от клини­чески здоровых животных, не имеющих признаков травмати­ческого ретикулита, перикардита, гнойного мастита, эндомет­рита, задержания последа и других первичных заболеваний органов и систем, которые могут оказать влияние на показа­тели крови. На фермах с однотипным кормлением кровь бе­рут от 20-30 животных контрольных групп (по 5-7 живот­ных в каждой группе).

Кровь отправляют в лабораторию в день ее взятия. При пересылке на исследование крови в лабораторию ветеринарный врач или фельдшер составляет список живот­ных с обязательным указанием, от какой контрольной груп­пы или в какой физиологической фазе находятся животные.

Перечень исследуемых показателей крови зависит от характера предполагаемой патологии, а также от возможно­стей лаборатории.

Общими показателями при проведении диспансеризации являются гемоглобин, число лейкоцитов, резервная щелочность. общий белок сыворотки крови, общий кальций, неорганический фосфор, каротин, специфическими - кетоновые тела, сахар, магний, сулемовая или другая печеночная пробы, микроэлементы, витамины А, С, Е и др.

Снижение уровня гемоглобина бывает при неполноценном кормлении, недостатке в рационах белка, минеральных и других веществ, при плохих зоогигиенических условиях содержания (темные, сырые, плохо вентилируемые помещения), хронических токсикозах. Это особенно ярко проявляется при патологии обмена веществ, связанной с не­достатком кобальта, железа, меди и витамина В12. Низкий уровень гемоглобина крови обнаруживают при кетозе, пора­жении печени, нитратно-нитритном токсикозе.

В организме животных концентрация общего белка сыворотки крови находится в довольно постоянных пределах и изменяется при глубокой патологии обмена веществ, заболевании печени и других органов. Снижение общего белка сыворотки крови (гипопротеинемия) отмечается при длительном недокорме, алиментарной остеодистрофии, плохом усвоении белков корма, вследствие хронических расстройств желудочно-кишечного тракта, недо­статка лимитирующих аминокислот, макро- и микроэлемен­тов, витаминов. К гипопротеинемии приводят большие потери белка при нефрозах и нефритах, а также снижение его син­теза при циррозах печени. Повышение общего белка сыворотки крови (гиперпротеинемия) в условиях интенсивного ведения животноводства бывает значительно чаще, чем гипопротеинемия.

Причиной гиперпротеинемии могут быть белковый пере­корм, острые гепатиты, дистрофии и другие болезни печени. При этом количество общего белка сыворотки крови повы­шается за счет высокомолекулярных, крупнодисперсных фракций его - глобулинов при одновременном снижении уровня альбуминов. У высокопродуктивных коров количество общего белка сыворотки крови повышается чаще при кетозе и осложнении его вторичной остеодистрофией.

Содержание общего белка сыво­ротки крови у коров в летний период при использовании долголетних культурных пастбищ выше, чем зимой; у высо­копродуктивных коров выше, чем у низкопродуктивных. Уро­вень его перед отелом несколько снижается, но названные изменения не выходят за пределы нормы.

В организме животных постоянство кислотно-щелочного равновесия (рН) поддерживается четырьмя основными бу­ферными системами: гемоглобиновой, бикарбонатной, фос­фатной, белковой.

В ветеринарной практике часто встречаются с явлением компенсированного метаболического ацидоза, проявляющего­ся в снижении резервной щелочности крови вследствие по­ступления в организм избытка кислых (фосфор, хлор, сера) и недостатка щелочных (натрий, кальций, калий, магний) элементов, кормления преимущественно концентратами или кислыми кормами (жом, барда, силос). Снижение резервной щелочности крови происходит при ацидозе рубца, кетозе, остеодистрофии и других формах нарушения обмена ве­ществ.

Снижение уровня кальция в крови отмечается при дли­тельном недостаточном поступлении его с кормом и водой и плохом усвоении вследствие дефицита витамина Д, болезней желудочно-кишечного тракта, нарушении оптимального со­отношения кальция и фосфора.

Гипокальциемия наступает при остеодистрофии, пастбищ­ной тетании, послеродовом парезе, нарушении функций щи­товидной и паращитовидных желез, заболеваниях печени (уменьшается всасывание кальция в кишечнике), а также при повышении концентрации в крови фосфора, нарушении соотношения между этими элементами).

Повышение уровня кальция в крови может быть при передозировке витамина Д, острых панкреатитах. При гипер­функции паращитовидных желез содержание кальция в крови увеличивается, а фосфора уменьшается из-за усиленного выделения его с мочой.

Снижение уровня неорганического фосфора в крови (гипофосфатемия) отмечается при недостатке этого элемента в кормах, плохом его усвоении вследствие заболеваний желу­дочно-кишечного тракта или печени, нарушения соотношения кальция и фосфора в кормах.

Гипофосфатемию наблюдают при остеодистрофии, одна­ко уменьшение количества фосфора в крови не всегда совпа­дает во времени с клинической картиной этого заболевания. В начальный период заболевания, когда костяк еще богат запасами солей фосфора, гипофосфатемии может не быть.

Гиперфосфатемия наступает при гиперфункции паращитовидных желез, нефритах, нефрозах, мышечном перенапряже­нии. В хозяйствах с.высококонцентратным типом кормления коров отмечается повышение уровня неорганического фосфо­ра в крови.

Важное диагностическое значение имеет соотношение в крови кальция и фосфора. У здоровых животных при нор­мальном уровне обмена веществ этот коэффициент равен 1,0-2,0. Повышение этого показателя более 3 (или снижение менее 1,5) указывает на патологию фосфорно-калъциевого обмена.

Снижение магния в крови отмечается при пастбищной тетании (до 1,5-1,2 мг% и ниже), алиментарной остеодист­рофии, послеродовом парезе, транспортной болезни у коров. Гипомагниемия наступает вследствие поступления в организм избытка калия (с молодой травой) или азота.

Снижение уровня сахара в крови (гипогликемия) бывает при кетозе, вторичной остеодистрофии и некоторых других болезнях обмена веществ, а также поражениях печени из-за токсикоза. Значительную гипогликемию у коров отмечают в первые дни после отела вследствие большого расхода энергии при родах.

Наиболее часто снижение уровня сахара в крови является следствием дефицита легкоусвояемых углеводов в кормах, избыточного потребления глюкозы организмом при высоко-концентратном типе кормления, преобладании в рационах кислых кормов, содержащих в большом количестве уксусную и масляную кислоты.

Повышение содержания сахара в крови (гипергликемия) может быть стойким или непродолжительным. Непродолжи­тельная гипергликемия бывает при скармливании скоту боль­ших количеств сахаристых кормов, а также при испуге, высо­кой температуре, стрессовом состоянии. Стойкая гипергликемия наблюдается при сахарном диабете вследствие гипер­функции островковой ткани поджелудочной железы, продуци­рующей инсулин и переводящей сахар в гликоген. Незначительная гипергликемия бывает при ацидозе рубца.

Кетоновые тела (бета-оксимасляная кислота, ацетоуксусная кислота и ацетон) являются промежуточными продуктами обмена жиров, углеводов и белков.

Обнаружить кетоновые тела в сыворотке крови можно с помощью реактива Лестраде и реактивных полосок. Чувствительность реакции - около 10 мг% ацетона и ацетоуксусной кислоты или около 25 мг% и более обще­го количества кетоновых тел.

У здоровых коров в цельной крови общее количество кето­новых тел составляет 1-6 мг%, причем на долю бета-оксимасляной кислоты их приходится в 3-4 раза больше, чем ацетона и ацетоуксусной кислоты. При кетозе соотношение меняется в сторону увеличения ацетона и ацетоуксусной кис­лоты.

Наибольшая концентрация кетоновых тел в крови у здоровых животных бывает в первые 3 месяца лактации и пос­ледний месяц стельности. У высокопродуктивных коров кон­центрация кетоновых тел в крови выше, чем у низкопродук­тивных.

Стойкое повышение кетоновых тел в крови (гиперкетонемия) встречается при кетозе, достигая 25 мг% и выше. Наи­большая их концентрация бывает в начальный период забо­левания; при хроническом течении, потере аппетита и прояв­лении признаков вторичной остеодистрофии содержание в крови кетоновых тел - в пределах нормы или немного выше ее. При развитии вторичной остеодистрофии вследствие кетоза кетонурию не выявляют.

Повышение уровня кетоновых тел в крови наступает при усиленном распаде жиров, в фазе интенсивной лактации, при гиперфункции щитовидной и поджелудочной железы.

Причиной гиперкетонемии может быть скармливание животным большого количества силоса, сенажа, кислого жома и других кормов, содержащих в избытке уксусную и масляную кислоты. Накоплению в крови кетоновых тел спо­собствует высокая концентрация аммиака, который тормозит реакцию окисления ацетил-КоА в цикле трикарбоновых кис­лот. Умеренная вторичная кетонемия может быть при травма­тическом перикардите, ретикулоперитоните, эндометрите, за­держании последа, хирургической инфекции и других септи­ческих процессах. Вторичная кетонемия (кетонурия) носит нестойкий характер и исчезает с устранением основного за­болевания.

Определяют каротин, витамин А, витамин Е, витамин С в сыворотке крови Снижение содер­жания в крови витаминов - признак развития гиповитаминозов.

В случае необходимости определяют мочевину в сыворот­ке крови, натрий и калий в плазме крови, йод в сыворотке крови, медь, цинк, кобальт, марганец в цельной крови.

Для характеристики липидного обмена определяют триглицериды, холестерол и другие вещества.

2.8.2.Исследование мочи

При диспансеризации животных исследованию мочи придают большое значение, т. к. в моче в ряде случаев можно установить патологические сдвиги, связанные с нарушением обмена веществ, а также с разви­тием других болезней.

Исследуют мочу от 10 - 20% животных контрольных групп (по 15 - 20 голов в группе). Для исследования подби­рают животных, не имеющих клинических признаков эндо­метрита, тяжелого, клинически выраженного мастита, задер­жания последа, травматического ретикулита, атонии преджелудков.

Мочу исследуют непосредственно на ферме, определяя реакцию (рН), наличие ацетоновых (кетоновых) тел, белок, билирубин, уробилиноген и др.

вещества. Для анализа используют мочу, взятую в утренние часы.

Собирают мочу при самопроизвольном мочеиспускании или побуждают животных к мочеиспусканию легким масса­жем в области вентральной части половых губ вблизи кли­тора.

Определение реакции мочи (рН). У здоровых коров рН мочи колеблется в пределах 7,0 - 8,6. Сдвиг реакции мочи в кислую сторону наступает при ацидотическом состоянии в организме, вызванном содержа­нием животных на рационах с преобладанием в них концентратов или кислых кормов. Сдвиг рН мочи в кислую сторону отмечается при кетозе, ацидозе рубца, воспалительных про­цессах в желудочно-кишечном тракте, пневмониях и некото­рых других воспалительных процессах.

Смещение реакции мочи в щелочную сторону наступает при алкалозе рубца, а также при поступлении в организм большого количества натрия и других щелочных элементов. Оно бывает также при циститах, пиелитах в результате брожения мочи и разложения мочевины.

Определение ацетоновых (кетоновых) тел в моче. Для определения ацетоновых тел в моче используют качественную пробу с реактивом Лестраде, основанную на реакции нитропруссида натрия с ацетоном и ацетоуксусной кислоты с появлением вишнево-фиолетового окрашивания. Чувствительность пробы по ацетону и ацетоуксуоной кислоте - около 10 мг%.

Реактив Лестраде готовят путем смешивания и тщательного растирания в ступке 1 части нитропруссида нат­рия, по 20 частей серно-кислого аммония и карбоната натрия безводного.

На фильтровальную бумагу насыпают около 0,1 г реакти­ва и на него наносят 2 - 3 капли мочи. Появление через 30 - 60 с сиреневого или темно-фиолетового окрашивания свиде­тельствует о наличии в моче кетоновых тел. Слабое окраши­вание смеси в розовый цвет с сиреневым оттенком означает, что в моче кетоновых тел не менее 20 мг%, в темно-фиолето­вый - свыше 20 мг%.

Значительная, стойкая кетонурия, обнаруживаемая у большого числа животных, свидетельст­вует о развитии кетоза. Умеренная, непродолжительная ке­тонурия может быть при дистонии преджелудков, эндометри­те, гнойном мастите, задержании последа.

2.8.3.Исследование молока

При проведении диспансери­зации коров в молоке определяют наличие кетоновых тел, а также используют данные о содержании жира и некоторых других веществ.

Кетоновые (ацетоновые) тела в молоке определяют непо­средственно на ферме или в лаборатории с помощью тех же экспресс-методов, которые применяют для обнаружения кето­новых тел в моче. При наличии кетоновых тел высокой кон­центрации реактив Лестраде с молоком дает вишнево-розовое окрашивание. Чем больше содержится кетоновых тел в молоке, тем интенсивнее окраска.

В молоке здоровых коров общее количество кетоновых тел (ацетон, ацетоуксусная и бета-оксимасляная кислоты) составляет 6-8 мг%.

2.8.4. Исследование рубцового содержимого

Диагности­ческое значение имеют рН, уровень молочной кислоты, аммиака, количество инфузорий, их подвижность, видовой состав и другие показатели.

Для исследования рубцовое содержимое берут утром через 3-4 ч после кормления, с помощью рото-пищеводного зонда и шприца Жанэ.

Первые порции содержимого рубца с наличием слюны выливают, так как они искажают результаты исследований.

Полученное содержимое отфильтровывают через 4 слоя марли от кормовых масс, консервируют 6-8 каплями хлоро­форма или толуола; в случае хранения или длительной тран­спортировки заливают слоем вазелинового масла (1 мл).

Для подсчета инфузорий пробу рубцовой жидкости кон­сервируют 10%-ным раствором формалина.

Определение рН. рН рубцовой жидкости опреде­ляют рН-метром или индикаторной бумагой, реактивными полосками. Оптимальный рН рубцового содержимого у коров, нетелей составляет 6,5-7,2. Снижение рН до 6,0 и ниже свидетельствует о развитии ацидоза рубца, сдвиг рН выше 7,2 характерен для алкалоза рубца.

Ацидоз рубца развивается при поедании большого коли­чества кормов, богатых сахарами и крахмалом (свекла, кормовая патока, зерновые злаковые, картофель и другие). При­чина алкалоза рубца - поедание большого количества зернобобовых, а также недоброкачественных (подгнивших) кормов и высоких доз мочевины.

Молочная кислота в содержимом рубца находится в нор­ме в следовых концентрациях. При избыточном углеводном питании (кормовая, полусахар­ная свекла более 25 кг в сутки), использовании больших количеств зерновых крахмалистых концентратов содержание молочной кислоты в рубцовой жидкости резко возрастает, вызывая снижение рН рубцовой среды, а позднее - развитие ацидотического состояния в организме. Снижение рН и на­копление молочной кислоты в рубцовом содержимом изме­няет видовой состав и подвижность инфузорий.

Количество инфузорий в содержимом рубца опре­деляют в счетной камере с сеткой Горяева.

В рубцовом содержимом находится около 100 видов инфу­зорий, общая их численность варьирует от 200 до 1200 тыс./мл и зависит от состава рациона, вида кормов.

Количество инфузорий уменьшается при снижении рН рубцового -содержимого ниже 6,5 или повышении более 7,2.

При оптимальном уровне рН (6,5-7,2) уровень аммиака в рубцовом содержимом составляет 6,5-25 мг% с.колебания­ми по сезонам года: в зимний период 6,5-20 мг%, в летний, при использовании травы долголетних культурных пастбищ, 20-25 мг%.

При алкалозе рубца, вызванном поступлением карбамида или азотсодержащих солей в больших количествах, когда рН среды превышает 7,2, в содержимом рубца аммиак в первые же часы возрастает до 60-70 мг% и удерживается на высоком уровне в рубце и крови в течение первых суток после скармливания.

2.9. Анализ кормления и содержания животных.

При выяснении влияния кормления на состояние обмена веществ и здоровья животных необходимо определить уровень и тип кормления, степень удовлетворения потребности в основных элементах питания и биологически активных веществах.

Уровень кормления, который определяют сопостав­лением общего количества кормовых единиц рациона с нормами.

Структуру рациона определяют путем вычисления процентного содержания каждого вида корма в общем количестве кормовых единиц. Процентное соотношение различных видов кормов по питательности в общем количестве скорм­ленных за год кормов характеризует тип кормления.

При анализе кормления животных важно опреде­лить содержание в рационах клетчатки, выраженное в про­центах к сухому веществу. Для этого подсчитывают содержа­ние сухого вещества в рационе и количество клетчатки.

Недостаток в рационах клетчатки ведет к наруше­нию рубцового пищеварения и обмена веществ, развитию руменита, ацидоза рубца, кетоза и других болезней, появле­нию диареи, снижению кислотности молока.

При избытке в рационах клетчатки снижается перевари­мость питательных веществ корма.

Для выяснения степени обеспеченности потребности животных в основных элементах питания проводят зоотехнический анализ рационов разных групп животных.

Контроли­руемыми показателями являются: сухое вещество, кормовые единицы, переваримый протеин, кальций, фосфор, каротин, сахар, соль поваренная, отношение кальция к фосфору, саха­ра к протеину. В необходимых случаях подсчитывают содер­жание в кормах магния, серы, калия, микроэлементов, вита­минов Д, Е.

При анализе рационов необходимо обращать внимание на состав комбикормов, учитывать их рецептуру, фактический набор компонентов, указанных в удостоверении, которое выдается заводом-изготовителем на каждую партию отправляе­мого корма.

Путем анализа рационов, сопоставления нормы питатель­ных и других веществ с их содержанием в кормах делают заключение о полноценности и сбалансированности питания.

Оценивают качество кормов на основании органолептического анализа, результатов химического, микологического, бактериологического и токсикологического исследований. Животным скармливают только доброкачественные корма.

Качество сена оценивают по цвету, запа­ху, содержанию сухого вещества, наличию ядовитых и механических примесей. Содержа­ние клетчатки в нем – 27-33%.

Испорченные грубые корма (сено, солома, полова и др.) имеют затхлый, плесневелый и гнилостный за­пах, не свойственный им цвет, к скармливанию такие корма не допускают. Не разрешается скармливать животным сено, содержащее свыше 1 % ядовитых и вредных растений, а также сено и солому, загрязненные илом, песком, землей и дру­гими механическими примесями.

Силос хорошего качества имеет рН 3,8—4,3, вла­жность не более 75%, желто-зеленого или желтого цвета, запах фруктовый, структура растений сохранена, без ослизнений. Общее количество кислот в хорошем силосе 1,9- 2,5%, молочной кислоты - более 60%, масляной кислоты нет.

Сенаж хорошего качества имеет фруктовый запах и специфический цвет, влажность 45-55%, рН 4,2-5,4.

При оценке силоса и сенажа обращают внимание также на загрязнен­ность их землей и пораженность плесенью. Корм, загрязнен­ный землей или пораженный плесенью, удаляют и к скарм­ливанию не допускают.

Доброкачественный жом светло-серого цвета, без запаха, содержит 0,1-0,2% органических кислот, масляная кислота отсутствует.

Для кормления скота используют преимуществен­но свежую барду. Не допускают к скармливанию животным барду, хранившуюся в открытых ямах длительное время.

Доброкачественные концентрированные корма име­ют соответствующий цвет и запах, влажность не более 15%.

Содержание вредных примесей (смеси ядовитых растений, спорыньи и головни) в фуражном зерне не должно быть бо­лее 1%, сорных примесей менее 8%. Не допускаются метал­лические примеси, стекло.

В зерне, комбикорме и мучнистых кормах не допускается содержание плесени, а также сильно токсичных грибов..

Запрещается скармливать животным протравленное зерно. В хлопчатниковом жмыхе количество свободного госсипола не должно превышать 0,02%.

При оценке корнеплодов обращают внимание на загрязненность землей, пораженность гнилью и плесенью.

В кормах необходимо учитывать содержание вред­ных и ядовитых веществ, предельно допустимые количества пестицидов, нитритов, нитратов и др.

2.10. Зоогигиеническая оценка ферм

Во время диспансеризации проводят общую зоогигиеническую оценку ферм, учитывают состояние полов, стойл, боксов, дверей и других конструкций, устройство вентиляций и уровень воздухообмена, отопление, канализацию, способы уборки и удаления навоза, освещение, технологию содержа­ния животных, раздачу кормов, распорядок дня, проверяют параметры температуры, влажности воздуха, содержания в нем аммиака, сероводорода и других газов.

2.11. Анализ полученных данных

При анализе результатов клинического исследования при­водят в процентах число животных с болезнями сердца, тахи­кардией (свыше 80 ударов в минуту), учащенным поверхно­стным дыханием (свыше 30 в минуту), гипотонией и атонией преджелудков (менее трех сокращений рубца в 2 минуты), увеличением и болезненностью печени, истончением и остео-лизисом последних ребер и хвостовых позвонков, маститами, бурситами, поражениями копытец и другими болезнями.

Результаты исследования мочи представляют так, чтобы было видно, какой процент исследованных проб в каждой из трех групп содержит ацетоновые тела (кетоновые), белок, низкий рН и др.

Результаты исследования крови сводят в таблицы с выде­лением трех групп животных, исчисляют процент проб с от­клонениями от нормы исследуемых показателей.

В результате изучения указанных комплексных исследований животных разделяют на три группы:

1) клинически здоровые без нарушения обмена веществ;

2)клинически здоровые животные с показателями, свидетельствующими о наличии нарушений обмена веществ;

3) клинически больные животные.