Сальмонеллезы

Возбудители - бактерии из рода Sаlmоnella-палочки, подвижные кроме S. рullоrum и S. gаllinагum), грамотрицательны, растут в анаэробних и аэробных условиях.

Идентификация сальмонелл основана на особенностях антигеннои структуры.

У сальмонелл насчитывают 64 соматических О-антигена, 67 жгутиковых Н-антигенов первой фазы и 20 - второй фазы, чтопоз-волило выявить у них свыше 60 серогрупп и балее 1300 серотипов. Целью бактериологического исследования является устсавление антигенной формулы выделенной сальмонеллы. Менее четко различаются сальманеллы по биохимическим признакам. Они не расщепля­ют лактазу и сахаразу, ферментируют глюкозу, маннит (кроме S. tuphlmurium) арабинозу (кроме S. chaleraesuis), дульцит (кроме S. dublen, S. еntеritidis,. S. mascow, S. rostock), образуют сероводород (кроме S. Chalera suis и S. typhl­suis) и не образуют индол. Из множества сальманелл в нашеи стране зареги­стриравано около 45 серотипов, принадлежащих к серогруппам А, В, C₁, С₂, D₁ И F₁, что облегчает лабораторную диагностику сальмонеллезав.

Среди животных наиболее распространены:.

у крупного рогатога скота - S. tурhimurium, S. dublin.;

у свиней - S. choleraesuis, S. typhisuis, S. tурhimurium, S. dublin, S. mаuсhеn;

у овец - S. abartus ovis, S. typhimurium;

у лошадей - S. abortus equi;

у куриных - S. pullorum, S.gallinarum; у водоплавающих - S. tурhimurium S. anatum,

S. lаndоn;

у пушных зверей - S. typhimurium, S. choleralsuis, S. dublin.

Формы заболевания. Различают три формы сальмонеллезов: первичные, или паратифы, возбудителями которых являются определенны сальмонеллы (паратифы телят, поросят, паратифозные аборты лошадеи и овец), вторичные сальмонеллезы, ослажняющие течение оснавнои инфекции, напри­мер чумы свиней, пастереллеза и др.;

бактерионосительство у внешне здоровых животных, когда сальмонеллы вы­деляются только с фекалиями или обнаруживаются в печени, желчном пузыре, печеночных и брыжеечных лимфоузлах.

Материал для исследования: свежие трупы мелких животных и птиц или паренхиматозные органы с регионарными лимфоузлами и трубчатая кость; абортированные плоды истечение из матки при аборте; кровь 5-10 мл; фекалии (при невозможнос;и посева в течение 3-4 ч пробу фекалий в пробирке консер­вируют тройным объемом 30%-ного водного раствора глицерина или 0,15 мл фосфатной буферной смеси, рН 8,0).

Посевы. Патологический материал высевают в МПБ, на косой агар и в чашки с двумя средами: Плоскирева и Левина (Эндо или висмут-сульфитным ага­ром). Из печени, селезенки и лимфоузлов делают многократные отпечатки свежи­ми срезами органа; для каждой чашки вырезают новый кусочек. Соскобы со стенки желчного пузыря или са среза трубчатой кости суспендируют в пробирке внебольшом абъеме физиологического раствора и по 2-3 капли взвеси рассе­вают шпателем по поверхнасти среды. Кровь высевают, как и взвесь.

Одновременно из тех же органов готовят несколько камплектов тонких: мазков-отпечаткав. После фиксирования один комплект окрашивают по Граму, а другой - комплексной флуоресцирующей сальмонеллезной сывороткой и проводят микроскопию.

При обнаружении контурного свечения бактерий на + + и выше устанавли­вают их принадлежность к той или иной группе. С этой целью окрашивают остальные комплекты препаратов, испальзуя раздельно, и прежде всего те О-сыворотки, которые сооветствуют сальмонеллам, наиболее часто выделяемым, у животных данного вида.

При сомнительнам или отрицательном результате люминесцентнай микроско­пии из глубины всех органов вырезают кусочки размерам 2Х2Х4 см и в закры­тых чашках инкубируют 4-6 ч при 37⁰С для накопления сальмонелл, после ­чего иммунолюминесцентное исследование повторяют.

Положительный результат первичный или повторной люминесцентной микра­скапии дает права на постановку окончательного диагноза.

Высевы инкубируют при 37⁰С до 3 суток и просматривают через 18-24 ч (48-72 ч). На плотных дифференциально-диагоастических средах сальмонеллы образуют круглые и гладкие, иногда шероховатые колонии, неокрашенные или слегка розоватые на средах Эндо и Плоскирева, со слабым фиолетавым оттенкаом на среде Левина или черные с металическим блеском на висмут-сульфитном ага ре.

Несколько наиболее типичных изолированных колоний проверяют в пластин­чатой РА с поливалентной сальмонеллезной О-сывороткаой, а мазки из них окра­шивают по Граму и комплексной флуоресцирующей сальманеллезной сываороткой и микроскопируют. При паоложительных результатах микроскопии и РА остав­шуюся бактерийную массу колоний отсевают в МПБ и на МПА для дальней­шего исследавания.

Из палученной чистой культуры делают высевы в полужидкий агар для оп­ределения подвижности, в среды Андредэ с глюкозой, лактозой, сахарозой, ман­нитом, дульцитом, арабинозой, в МПБ на образавание индола и сероводородо и на МПА.

Одновременно проводят дальнейшую идентификацию культуры в пластинча­той РА с монорецепторными О-сыворотками, входящими в поливалентную. Оп­ределив серогруппу сальмонеллы, уточняют ее серотип в реакции с соответствую­щими Н-сыворотками первой фазы, а потом - второй. Для агглютинации с О-сыворотками культуру берут из верхней части косяка, а для Н-сыворотк­у конденсата: здесь жгутики у сальманелл наибалее выражены.

Если выделенный штамм сералагически типирован и обладает соответствую­щими культурально-биохимическими признаками, диагноз считают устанавлен­ным и культуру испытывают на антибиотикоустойчивость (см. Определение чувствительнасти микробов к антибиотикам).