double arrow

Исследование микробной обсемененности объектов внешней среды

3

Бактериологическое исследование микробной обсемененности предметов внешней среды предусматривает выявление стафилококка, синегнойной палочки, бактерий группы кишечных палочек БГКП (ОКБ). Забор проб с поверхностей различных объектов осуществляют методом смывов. Взятие смывов производят стерильным ватным тампоном на палочках, вмонтированных в пробирки, или марлевыми салфетками, размером 5*5 см. Для увлажнения тампонов и салфеток используют стерильный физраствор. При контроле мелких предметов смывы забирают с поверхности всего предмета. При контроле предметов с большой поверхностью смывы проводят в нескольких местах исследуемого предмета площадью примерно 100-200 см2.

Для выделения стафилококков делают посев непосредственно на чашку Петри с желточно-солевым агаром (ЖСА) и бульоны накопления (6,5% солевой и с 1% глюкозы). Далее работают по схеме исследования на стафилококк.

Для выявления БГКП (ОКБ) производят посев на среду обогащения Кесслера или 10-20% желчный бульон. Через сутки инкубирования при 370 С делают пересев на среду Эндо. Подозрительные колонии на среде Эндо (лактозоположительные) микроскопируют и идентифицируют по схеме.

Для выявления синегнойной палочки специальные посевы можно не производить. Обычно колонии синегнойной палочки удается выявить на кровяном агаре или на среде Эндо. Далее – исследование по схеме.

Ориентировочный перечень объектов, подлежащих

Бактериологическому контролю

А. Наркозная комната

1. Интубационная трубка

2. Маска наркозного аппарата

3. Тройник наркозного аппарата

4. Гофрированная трубка

5. Ларингоскоп

6. Роторасширитель

7. Дыхательный мешок

8. Руки врачей-анестезиологов-реаниматологов, сестер-анестезиологов

 

Б. Предоперационная

1. Тазы для мытья рук хирургов

2. Чистые щетки для мытья рук

3. Фартуки (кленнчатые и полиэтиленовые)

 

В. Операционная

1. Рабочий стол анестезиологов

2. Операционный стол

3. Шланг кислородной подводки

4. Смывы с рук всех участвующих в операции

5. Кожа операционного поля

 

Г. Послеоперационные палаты, отделения и палаты

Реанимации и интенсивной терапии

  1. Кровать, подготовленная для больного
  2. Полотенце для рук персонала и смывы с рук
  3. Щетка на раковине
  4. Шланг кислородной подводки
  5. Запасная наркозная аппаратура (набор реанимационной укладки)
  6. Шланг вакуумотсоса
  7. Внутренняя поверхность холодильника (для хранения лекарств)
  8. Градусники

 

Д. Перевязочная

1. Кушетка для перевязок

2. Полотенце для рук персонала

3. Щетка на раковине

4. Халат медицинских сестер

5. Руки врачей, медицинских сестер

6. Рабочий медицинский стол

7. Внутренняя поверхность холодильника для хранения лекарств

 

Контроль стерильности изделий медицинского назначения

Раньше проводился также в соответствии с Приказом № 720, в настоящее время работа ведется по Методическим указаниям по дезинфекции, предстерилизационной очистке и стерилизации изделий медицинского назначения – МУ 287-113-98 г.

Контроль стерильности изделий, простерилизованных в ЛПУ, проводят в специально оборудованных помещениях, соблюдая асептические условия, исключающие возможность вторичной контаминации изделий микроорганизмами.

В стационарах, имеющих централизованные стерилизационные, контролю на стерильность подлежит не менее 1% от числа одновременно простерилизованных изделий одного наименования.

В стационарах, не имеющих централизованных стерилизационных и осуществляющих стерилизацию в отделениях, контролю на стерильность подлежат не менее двух одновременно простерилизованных изделий одного наименования.

Методика и техника посева на стерильность

Посевы на стерильность проводит бактериолог с помощью лаборанта.

Контроль стерильности проводят путем прямого посева (погружения) изделий целиком (при их небольших размерах) или в виде отдельных деталей (разъемные изделия) и фрагментов (отрезанные стерильными ножницами кусочки шовного, перевязочного материала и т.п.) в питательные среды. Объем питательной среды в пробирке (колбе, флаконе) должен быть достаточным для полного погружения изделия (деталей или фрагментов изделия).

При проверке стерильности более крупных изделий проводят отбор проб методом смывов с различных участков поверхности изделий: с помощью стерильного пинцета каждый участок тщательно протирают стерильной марлевой салфеткой, увлажненной стерильным физраствором или раствором нейтрализатора (при стерилизации раствором химического средства). Каждую салфетку помещают в отдельную пробирку с питательной средой.

У изделий, имеющих функциональные каналы, рабочий конец опускают в пробирку с питательной средой и с помощью стерильного шприца или пипетки 1-2 раза промывают канал этой средой.

При контроле стерильности проводят посев на тиогликолевую среду (для культивирования бактериальной флоры) и среду Сабуро (для культивирования микроскопических грибков).

При контроле изделий каждого наименования обязателен одновременный посев на обе указанные питательные среды.

Посевы в тиогликолевую среду выдерживают в термостате при температуре 320 С, посевы в среду Сабуро – при температуре 20-220 С в течение 14 суток при контроле изделий, простерилизованных растворами химических средств и газовым методом, в течение 7 суток – изделий, простерилизованных термическими (паровой, воздушный) методами.

При отсутствии роста микроорганизмов во всех пробирках делают заключение о стерильности изделий.

 

 


Понравилась статья? Добавь ее в закладку (CTRL+D) и не забудь поделиться с друзьями:  


3

Сейчас читают про: