Болезни, вызываемые ресничными инфузориями

102

Инфузории — наиболее сложно устроенные одноклеточные среди простейших. Органеллами передвижения служат реснич­ки, целиком или частично покрывающие поверхность тела. По­стоянство формы клетки обеспечивает плотная пелликула. У большинства инфузорий ротовое отверстие — цитостом лежит в особом углублении — перистоме. Рот ведет в глотку — цито-фаринкс. В эндоплазме имеется сложно устроенный ядерный аппарат, пищеварительные и сократительные вакуоли. Беспо­лое размножение происходит путем деления на две и более клеток. Половое размножение — конъюгация.

Хилодонеллез

Остро протекающее протозойиое- заболевание карпов, бе­лого и пестрого толстолобиков, белого амура, форелей, буффа-ло, проточного сома, поражающее жабры и покровы тела рыб.

В СССР отмечен в Ленинградской области, в центральных, западных и северо-западных районах европейской части, на Украине, в Сибири. Болезнь проявляется в форме энзоотии и со­провождается массовой гибелью рыб.

Этиология. Возбудитель — ресничная инфузория Chilodoncl-la cyprini. Тело паразита почковидное, сплющенное в спинно-брюшном направлении с выемкой на заднем конце. Длина 40— 70, ширина 30—57 мкм. Реснички имеются только на брюшной стороне в виде нескольких параллельных рядов. На переднем конце находится ротовое отверстие, от которого отходит глот­ка, снабженная палочковым аппаратом. Аппарат используется паразитом во время питания. Макро- и микронуклеусы распо­ложены ближе к заднему концу. Хорошо заметны две сокра­тительные вакуоли. Размножаются хилодонеллы поперечным делением, половое размножение — по типу конъюгации. При неблагоприятных условиях образует стойкие цисты.

Эпизоотологические данные. Хилодонелла является холодо-любивой формой. Массовое ее размножение наступает при тем­пературе 5—10 °С. Повышение температуры замедляет ее раз­множение, а при +20 °С прекращается.

Болеют хилодонеллезом годовики во второй половине зимы и весной. Летом рыбы освобождаются от паразита, а осенью число зараженных рыб снова возрастает. Заражение осуществ­ляется путем перехода хилодонеллы с одной рыбы на другую. В период зимовки создаются благоприятные условия для ин­тенсивного размножения инфузорий. Плотность посадки, ухуд­шение гидрологического и гидрохимического режимов в зимо-вальниках, истощение рыб после зимовки имеют решающее значение в возникновении эпизоотии. В первую очередь забо­левают наименее упитанные сеголетки, а затем и хорошо упи­танные. Источником инвазии являются дикие и сорные рыбы, а также цисты паразита, проникающие в пруды из источника водоснабжения.

Патогенез, С помощью палочковидного аппарата хилодонел­ла питается слизью и содержимым эпителиальных клеток рыбы. В результате механического воздействия нарушаются дыха­тельные функции поверхности кожи и жабр.

Клинические признаки и течение болезни. Характерным кли­ническим признаком является появление голубовато-серого налета на поверхности кожи рыб, состоящего из слизи и отмер-

103

ших эпителиальных клеток. Жабры приобретают белую или светлую окраску в результате некроза жаберной ткани. Рыбы ведут себя беспокойно, поднимаются к прорубям, заглатывают воздух. После таяния льда годовики выпрыгивают из воды и плашмя падают обратно в воду. Это очень существенный признак при хилодонеллезе, связанный с нарушением кожного дыхания.

Диагноз и дифференциальный диагноз. Диагноз устанавли­вают на основании клинических признаков и результатов пара-зитологического анализа. Для лабораторной диагностики скаль­пелем делают соскоб слизи с кожи рыбы, наносят на предмет­ное стекло, добавляют несколько капель водопроводной воды и накрывают покровным стеклом. Если в поле зрения микроско­па при увеличении 7X8 будет обнаружено свыше 20 хилодо-нелл, то это свидетельствует о начале возникновения заболе­вания. Единичные особи заболевания вызвать не могут. Из каждого пруда исследуют не менее 25, а клинически осматри­вают не менее 100 рыб.

Меры борьбы и профилактика осуществляются согласно «Инструкции о мероприятиях по борьбе с хилодонеллезом и триходиниозом рыб в прудовых хозяйствах». При вспышке хилодоиеллеза в период зимовки проводят лечение рыб непо­средственно в зимовальных прудах. В качестве лечебных пре­паратов используют поваренную соль, красители: малахитовый зеленый, основной ярко-зеленый, основной фиолетовый «К».

Поваренную соль вносят в зимовальные пруды при темпе­ратуре воды не ниже +1^СС, прекращая проточность воды и создавая концентрацию 0,1—0,2 %. Продолжительность 1— 2 суток. Если температура воды в пруду ниже +1 °С, рыбу обрабатывают малахитовой зеленью, создавая концентрацию 0,1—0,2 г/м³. Рабочий раствор в соотношении 5: 1000, экспози­ция 2—3 суток при закрытом водоснабжении.

При обработке рыб основным ярко-зеленым и основным фиолетовым «К» создают концентрацию 0,1—0,2 г/м³ 100%-ного препарата. Водоснабжение не прекращают. Через 3—5 суток рыба полностью освобождается от инфузорий.

Применяют также комбинированные ванны, такие же, как и при ихтиободозе, разработанные чехословацкими ихтиопато-логами и модифицированные применительно к нашим условиям.

Для предупреждения возникновения и распространения хилодоиеллеза в хозяйстве необходимо перед зимовкой рыб дезинвазировать ложа прудов хлорной из расчета 3—5 ц/га или негашеной известью из расчета 25 ц/га для уничтожения цист паразитов и обрабатывать рыб перед посадкой в зимо-вальники в антипаразитарных ваннах из 5 %-ного раствора поваренной соли с экспозицией 5 мин. Не менее важным меро-

104

приятием является создание благоприятных условий, стимули­рующих рост и повышенную упитанность рыб в период выра­щивания.

Ихтиофтириоз

Ихтиофтириоз — остро протекающее протозойное заболева­ние карпов, сазанов, карасей, белых амуров, белого и пестрого толстолобиков, большеротого буффало, проточного сома, щук, поражающее кожу, плавники, жабры.

В СССР до 1945 г. гибель рыб от ихтиофтириоза не наблю­далась. Начиная с 1945 г. зарегистрированы случаи гибели рыб в прудах Белоруссии, северо-западных и центральных областях европейской части СССР, на Украине.

Этиология. Возбудитель — ресничная инфузория Ichthyo-phtirius multifiliis. Тело круглое или яйцевидное, диаметром до 1 мм, покрыто меридионально расположенными ресничками. Маленький круглый цитостом с короткой глоткой также имеет реснички. Ядерный аппарат лежит почти посредине тела. Ма-кропуклеус подковообразно изогнут, рядом с ним плохо раз­личимый микронуклеус. В клетке много сократительных ва­куолей.

Размножается ихтиофтириус летом, вне организма рыбы. Зрелые паразиты разрывают эпителиальный бугорок на теле рыбы, опускаются на дно пруда или прикрепляются к различ­ным предметам и образуют цисту, внутри которой многократно делятся с образованием большого числа дочерних особей — бродяжек. Покидая цисту бродяжки плавают в воде некоторое время (до двух суток), после чего прикрепляются к телу рыбы и активно внедряются в ткани. Питаются клеточными элемен­тами хозяина. Растущие ихтиофтириусы образуют пустулу за счет обрастающего их эпителия. Бродяжки, не нашедшие рыбу, погибают.

Эпизоотологические данные. Заболеванию подвержены все возрастные категории рыб, но наиболее восприимчивы к ихтио-фтириозу сеголетки, хотя в отдельных случаях могут погиб­нуть и производители. Оптимальная температура для развития паразита 25—26 °С. Поэтому наиболее тяжело болеют рыбы весной и летом. Осенью число паразитов уменьшается. В по­следние годы отмечают размножение инфузорий и в зимо­вальных прудах при температуре 4—5 °С.

Источниками инвазии служат больные рыбы и рыбы стар­ших возрастов, являющиеся паразитоносителями, а также сорные и дикие рыбы.

Патогенез. Ихтиофтириусы оказывают на рыбу механиче­ское и токсическое влияние. Бродяжки паразита, закончив свое развитие, разрушают кожу, вызывают слущивание жаберного

105

эпителия, нарушая тем самым кожное и жаберное дыхание. Эпидермис разрыхлен, цитоплазма эпителиальных клеток на­бухшая, вакуолизирована. Вокруг ихтиофтириусов образуется зона запустения (лизированные клетки). Эпидермальные клет­ки, окружающие трофозоитов, дистрофически изменены. В участках дермы, расположенных под паразитом, возникает диффузная инфильтрация соединительной ткани. В крови боль­ных рыб отмечается снижение натрия и увеличение кальция. Резко снижается количество гемоглобина, повышается СОЭ, изменяется лейкоцитарная формула в сторону увеличения чи­сла нейтрофилов.

Клинические признаки и течение болезни. На поверхности тела больных рыб хорошо заметны мелкие, серовато-белые бу­горки. Внутри каждого бугорка находится одна, реже две инфузории. При слабых инвазиях рыба ведет себя беспокой­но, отдельные особи подходят на приток, перестают реаги­ровать на внешние раздражители. При сильных инвазиях беспокойство рыб усиливается, они массами подходят к при­току. Кожа сходит клочьями, часто повреждается роговица глаз, обескровливается жаберная ткань. Рыба слабеет и гиб­нет.

Патологоанатомические изменения. Печень уменьшена в раз­мерах, бледная. Почечная ткань перерождается, изменения характерны для зернистой дистрофии.

Диагноз и дифференциальный диагноз. Диагноз ставят на основании клинических признаков и микроскопического иссле­дования соскобов с кожи и жабер. Обнаружение в поле зрения микроскопа при увеличении 7X8 более 10 ихтиофтириусов ука­зывает на возникновение заболевания.

Иммунитет. По данным А. Бушкиля (1910) и О. Н. Бауэра (1959), интенсивность повторного заражения рыб ихтиофтирио-зом ниже первичного. Предполагают наличие постинвазионного иммунитета, сохраняющегося до 8 мсс.

Меры борьбы и профилактика проводятся согласно «Ин­струкции о мероприятиях против заболевания рыб ихтиофти-риозом в прудовых, нерестово-вырастных хозяйствах и на рыбоводных заводах». Для лечения рыб, больных ихтиофтирио-зом, в рыбоводных хозяйствах применяют следующие лечебные препараты; малахитовый зеленый, ярко-зеленый оксалат, фиоле­товый «К», метиленовую синь. В ГДР, ФРГ, ЧССР, ПНР, НРБ, в некоторых хозяйствах СССР успешно применяют растворы малахитового зеленого. Им можно обрабатывать рыб в ван­нах, бассейнах, непосредственно в спущенных зимовальных или выростных прудах, создавая концентрацию 0,1—0,9 г/м³ в за­висимости от прозрачности воды. Экспозиция обработки 4— 5 ч. Рыбу обрабатывают 2—3 раза через 1—2 суток.

106

Технический ярко-зеленый оксалат и технический фиолето­вый «К» проникают под эпителий и вызывают гибель парази­та. Весной рыбу обрабатывают в зимовальных прудах, созда­вая в них концентрацию раствора 0,1—0,2 г/м³ при экспозиции от 1 до 2 суток. Оба препарата безвредны, дешевле малахи­тового зеленого и легко доступны.

В. М. Ивасик с соавторами (1965) рекомендуют для борь­бы с ихтиофтириозом внесение «по воде» негашеной извести для повышения рН воды до 8,5—9,0, что препятствует размно­жению паразитов.

В ЧССР рыбоводы применяют ванны из метиленовой сини. Для этого берут 200 мг метиленовой сини и растворяют в 1 л чистой прудовой воды, получая раствор в соотношении 1:5000. Продолжительность обработки при температуре до 10 °С достигает 7 дней. На этот период в прудах прекращают водообмен.

В КНР используют ртути нитрат, уничтожающий ихтиофти-риуса на всех стадиях его развития. Для ванн рекомендуется концентрация раствора 2 мг/л с экспозицией 3 ч при темпе­ратуре 8—15 °С. При обработке рыбы в пруду употребляют растворы концентрацией 0,1—0,3 мг/л и экспозиции 4 суток. При температуре ниже 10 °С содержание в воде ртути нитрата доводят до 0,3 мг/л, при 10—20 °С до 0,2—0,25 и при темпе­ратуре выше 20 °С до 0,1—0,15 мг/л.

Для оздоровления рыб в хозяйствах применяется ряд ме­роприятий ветеринарно-санитарного и рыбоводного характера, в частности просушивание, промораживание и известкование ложа прудов. Рекомендуется изолированное содержание молоди и производителей, нельзя допускать в пруды сорную и мало­ценную рыбу, не нарушать биотехнику выращивания рыб в прудах.

Триходиноз

Триходиноз — остро протекающее протозойное заболева­ние, поражающее кожу, жабры и изредка внутренние органы (мочевой пузырь, мочеточники) карпа, сазана, карасей, форели, амуров, толстолобиков, большеротого буффало, проточного сома.

В СССР отмечен в центральных районах европейской ча­сти, на Украине. Заболевание нередко принимает форму эпизо­отии с массовым отходом рыб.

Этиология. Возбудитель — кругоресничные инфузории из ро­дов Trichodina, Tripartiella, Trichodinella. У прудовых рыб чаще всего паразитируют Trichodina pediculus, T. domerguei f. acuta, Т. nigra, Tripartiella bulbosa, trichodinella epizootica.

107

Тело инфузории имеет блюдцеобразную форму диаметром 26—75 мкм с расположенным внутри опорным диском, состоя­щим из кольца хитиноидных пластинок, вооруженных изогну­тыми крючьями разной формы и размеров. Тело окружено ресничками. Ядерный аппарат состоит из подковообразного макронуклеуса и вытянутого микронуклеуса. Имеется одна сократительная вакуоль. Размножается делением, реже — конъюгацией.

Деление триходин происходит на теле хозяина и скорость его зависит от температуры воды. Отделившиеся от тела рыбы триходины могут жить от 1 до 1,5 суток.

Эпизоотологические данные. К триходинозу восприимчивы все возрастные группы рыб, но наиболее тяжело болеют маль­ки, сеголетки и годовики. Заболевание наблюдается весной, летом и зимой. У карпов весной и летом чаще всего паразити­руют Т. domerguei f. acuta, T. epizootica. У растительноядных рыб, кроме того, Т. bulbosa. В зимовальных прудах в связи с большой плотностью посадки создаются благоприятные усло­вия для распространения триходин. Возбудителем зимней фор­мы триходиноза является Т. pedicuius. Триходиноз часто протекает совместно с хилодонеллезом и ихтиофтириозом, образуя смешанные инвазии. Источник инвазии — больные рыбы, рыбы-паразитоносители, вода, содержащая отделивших­ся от рыб паразитов.

Патогенез. По данным Э. М. Ляймана (1963) и А. К. Щер­бины (1973), триходины, повреждая кожу и жабры рыб, ока­зывают на нее механическое воздействие. Frank (1972) отме­чает, что паразиты, глубоко проникая в жаберную ткань, на­рушают циркуляцию крови и высказывает предположение, что при этом триходины выделяют ферменты, растворяющие цито­плазму клеток рыбы, после чего ее высасывают. Н. С. Иванова (1967) при изучении Т. niger указывает на ее механическое и токсическое воздействие. Прикрепляясь к концам респиратор­ных складок жабр рыб, триходина своими крючьями разры­вает эпителий. Раздражение нервных окончаний жаберных лепестков вызывает усиленное слизеотделение, что затрудняет дыхание рыб.

Токсическое влияние выражается в отравлении рыб продук­тами распада ткани и крови.

Клинические признаки и течение болезни. Тело больных рыб покрыто слизистым серовато-матовым налетом, который особенно хорошо заметен на голове и спине. Кожа тускнеет, теряет свой нормальный цвет и блеск. Рыбы ведут себя беспо­койно, скапливаются на притоке, не реагируют на внешние раздражители, зимой подходят к прорубям. Жабры гипереми-рованы, отечны. При сильных инвазиях рыбы гибнут.

108

Патологоанатомические изменения. Характерны анемичность и сильное истощение трупов рыб, уменьшен объем паренхима­тозных органов.

Диагноз и дифференциальный диагноз. Диагноз устанавли­вают на основании клинических признаков и микроскопических исследований соскобов слизи с кожи и жабр. При нахождении 10—15 паразитов в поле зрения микроскопа при увеличении Х80 признаки болезни не выражены. Обнаружение 50—100 паразитов говорит о возникновении триходиноза.

Меры борьбы и профилактика такие же, как и при хило-донеллезе. В рыбоводных хозяйствах ВНР хорошо зарекомендо­вал себя препарат меди окиснохлоридной, в котором содержа­ние меди составляет 45 % общей массы препарата. Применение его в концентрации 4 мг/л воды в период подращивания маль­ков белого амура и белого толстолобика обеспечивает полную гибель триходин и хилодонелл через сутки после воздействия препарата. Такие же результаты были получены при обработ­ке рыб медью окиснохлоридной в выростных прудах при монокультуре мальков толстолобика, амура и в поликультуре мальков карпов, толстолобиков и амуров. В больших прудах рекомендуется проводить обработку в ветреную погоду для лучшего перемешивания препарата с водой. В указанной кон­центрации препарат не опасен для рыб и рыбоводов.

ГЕЛЬМИНТОЗЫ

К возбудителям гельминтозов прудовых рыб относятся мо­ногенетические и дигенетические сосальщики, ленточные и круг­лые черви, а также пиявки.

Моногеноидозы

Моногеноидозы — это болезни, возбудителями которых яв­ляются моногенетическйе сосальщики — моногенеи, характери­зующиеся прямым циклом развития и хорошо выраженной специфичностью в выборе хозяина. Моногенеи наносят большой экономический ущерб прудовому рыбоводству, особенно дак-тилогирусы и гиродактилюсы.

109

Дактилогирозы карпов

Возбудителями этой болезни являются моногенетические сосальщики нескольких видов из рода Dactylogyrus. Наиболее патогенными для карпов являются: D. vastator и D. extensus.

Дактилогироз, вызываемый Dactylogyrus vastator. Остро протекающее инвазионное заболевание карпа, сазана и их гибридов, поражающее жаберные лепестки рыб. Болеют и ка­раси. В литературе нередко описывается как дактилогироз А в южных районах нашей страны карповодства часто является причиной гибели рыб.

Этиология. Возбудитель достигает длины 0,5—1, ширины 0,15—0,38 мм. На переднем конце тела находятся четыре го­ловные лопасти, взрослые и личинки имеют четыре пигменти­рованных глазка. Прикрепительный диск вооружен двумя центральными крупными крючьями и 14 мелкими краевыми крючочками. В передней половине тела находится копулятив-ный аппарат.

Паразит размножается яйцами, которые откладывает на тело рыбы или в воду. В матке находится одно яйцо, тем не менее плодовитость гельминта велика, за 6 ч он может отло­жить 14—29 яиц. Из яйца выходит личинка, плавающая в воде с помощью ресничек около 1—1,5 суток. Прикрепившись к рыбе, она сбрасывает реснички, растет, развивается, перемещается с кожи на жабры, где и превращается в зрелого червя.

На сроки развития яиц, длительность жизни свободнопла­вающих личинок, рост паразитов, темп откладывания ими яиц в значительной степени влияет температурный фактор. Наибо­лее оптимальной является температура 22—24 °С, понижение ее угнетающе действует на дактилогирусов.

Эпизоотологические данные. Возбудитель может паразити­ровать у всех возрастных групп карпа, но наиболее тяжело болеет молодь длиной 2—6 см. Рыбы старших возрастов менее восприимчивы к заболеванию и являются паразитоносителями. Болезнь чаще всего проявляется летом в июне—июле, к осени интенсивность инвазии резко снижается. Развитию болезни способствуют плотные посадки рыб в прудах, плохое питание, неблагоприятные условия окружающей среды.

Патогенез изучен слабо. Специальные исследования прово­дила А. В. Успенская (1961), которая установила, что дакти-логирусы, поселяясь на жабрах рыб, питаются тканями и кро­вью хозяина, разрушают жабры, что приводит к изменению их гистологического строения. Нарушается кровоснабжение, газо­обмен, снижается интенсивность дыхания. Изменяется картина крови. Уменьшается количество гемоглобина, повышается РОЭ, увеличивается количество нейтрофилов.

110

Клинические признаки и течение болезни. Заболевшие мальки ведут себя беспокойно, собираются на притоке, подни­маются к поверхности, заглатывают воздух. Жабры бледные, мозаично окрашены, обильно покрыты слизью. На поврежден­ных участках часто поселяются паразитические грибы, ускоря­ющие некротический распад жаберной ткани. Характерно силь­ное разрастание эпителия жаберных лепестков и отторжение омертвевших участков. Иногда на жаберных лепестках обра­зуются длинные нитевидные выросты. У переболевших маль­ков измененные части жабр со временем регенерируют.

Диагноз и дифференциальный диагноз. Диагноз устанавли­вают на основании клинических признаков, эпизоотологических данных, микроскопии жабр и определения видовой принадлеж­ности паразита. У мальков, сеголетков и годовиков жаберные лепестки отделяют от жаберных дуг, слегка компрессируют между двумя предметными стеклами с добавлением воды и просматривают сначала на малом, а затем среднем увеличе­нии микроскопа. По данным А. В. Успенской (1961), для маль­ков длиной до 2 см и массой до 200 мг летальным является нахождение 20—40 паразитов, длиной 2,5 см и массой 200— 300 мг — 60—80, длиной 3,5—4 см и массой 750—1500 мг— 140—160 дактилогирусов. Из каждого пруда берут для исследо­вания 15—20 рыб.

Иммунитет. В. Л. Владимиров (1967) указывает, что у пе­реболевших дактилогирозом карпов возникает относительный суперинвазионный иммунитет, проявляющийся в ограничении последующих инвазий.

Меры борьбы и профилактика осуществляются согласно «Инструкции о мероприятиях по борьбе с дактилогирозом рыб в прудовых и нерестово-вырастных хозяйствах». Для лечения больных рыб применяют солевые и аммиачные ванны. Солевые ванны из 5 %-ного раствора поваренной соли не гарантируют 100 %-ной гибели дактилогирусов. Лучший эффект дают ком­бинированные ванны из 5 %-ного раствора поваренной и горь­кой соли в соотношении 3,5: 1,5 продолжительностью 5 мин. Используют также 0,1 %-ные аммиачные (с нашатырным спир­том) ванны при температуре 19—27 °С с экспозицией 0,5 мин. Непосредственно в выростных прудах рыбу обрабатывают меди аммиакатом (соединение сернокислой меди и аммиака). Препарат вносят через 2—3 недели после пересадки мальков четырехкратно с интервалом 48 ч. Концентрация меди после каждого внесения должна быть 0,1—0,2 г на 1 м³ воды. При этом учитывается жесткость воды и ее прозрачность (Авдо-сьев Б. С, 1966).

Применяют также растворы хлорофоса (диптерекс, негувон) непосредственно в прудах. Препарат вносят из расчета 0,6—

111

1 г/м³ воды по поверхности водного зеркала. Водообмен пре­кращают на 48 ч. При рН 6,6—7,5 вносят 1 г/м³, при рН 7,6— 8,2 — 0,8—0,9 и при рН 8,3—8,6 — 0,6—0,7 г/м³ препарата.

Необходимо создавать в прудах оптимальные условия для интенсивного роста молоди карпа, что важно для более бы­строго выхода мальков из опасного возраста, не допускать совместной посадки мальков с рыбами старших возрастов и карасями, которые могут быть паразитоносителями, осущест­влять санитарный контроль при перевозках и посадках рыбы.

Дактилогироз, вызываемый Dactylogyrus extensus. Инвази­онное заболевание, поражающее жабры карпа, сазана и их гибридов и часто описываемое, как дактилогироз Б.

В СССР возбудитель был завезен вместе с амурскими са­занами. Обнаружен в северо-западных областях РСФСР, При­балтике. Западной Украине. Вызывает большой отход мальков и рыб старших возрастов.

Этиология. D. extensus — один из наиболее крупных дакти-логирусов. Достигает длины 1,5 и ширины 0,31 мм. Поддержи­вающая пластинка копулятивного органа с расширенным кон­цом, срединные крючья серповидные, с внутренним отростком. Развитие протекает сходно с D. vastator, но особенности эко­логии делают его наиболее опасным для рыб старших возра­стов. Прикрепляется не к концам жаберных лепестков, а к се­редине респираторных складок.

Эпизоотологические данные. Возбудитель — холодолюбивый паразит и в северных районах карповодства представляет для рыб большую опасность, чем в южных. В отличие от D. vasta­tor, поражает наиболее сильно старшие возраста рыб, что свя­зано с тем, что личинки паразита живут в придонных слоях воды и мало контактируют с планктонными мальками. Опти­мальными условиями являются низкая температура (13—15 °С), высокая аэрация и слабая освещенность воды. Максимальное заражение наблюдается весной, снижается летом и снова воз­растает осенью. Источником заражения являются ремонтные рыбы и производители.

Патогенез. Прикрепляясь к средней части жаберных лепест­ков, паразиты вызывают разрастание эпителия, который из однослойного превращается в многослойный, ряд клеток пере­рождаются в слизистые, происходит усиленное выделение сли­зи, затрудняющей газообмен. Изменяется лейкоцитарная фор­мула крови: увеличивается количество моноцитов, нейтрофилов, полиморфноядерных агранулоцитов.

Клинические признаки и течение болезни такие же, как и при дактилогирозе, вызываемом D. vastator.

Диагноз и дифференциальный диагноз ставят на основании клинических признаков, данных эпизоотологии и определения

112

видовой принадлежности паразита. Мальки карпа длиной 4— 4,5 см погибают при интенсивности заражения 20—30 экземпля­рами дактилогирусов.

Меры борьбы и профилактика. Применяют ванны из водных растворов хлора и аммиака. Промывка жабр производителей концентрированным раствором хлора (1,5 мг/см³) освобождает их от паразитов. Аммиачные ванны из 0,2 %-ного раствора аммиака в течение 1 мин при температуре 10°С для сеголетков массой 20—25 г и из 0,15 %-ного раствора для годовиков пол­ностью избавляет рыб от паразитов. Ванны из поваренной соли эффекта не дают в связи с солеустойчивостью гельминта.

Применяют также растворы хлорофоса (диптерекс, негу-вон) непосредственно в прудах. Методика такая же, как и при дактилогирозе А. Осуществляются общие профилактические мероприятия, направленные на предотвращение контакта меж­ду возрастными группами рыб. При сильных заражениях сего­леток в выростных прудах производят дезинвазию ложа, осу­шение, известкование, гибельно действующее на личинок пара­зита.