2017-11-30
2431
Вопрос 6. Рабочая поверхность стола для лаборантов должна быть площадью не меньше:
- 100×30 см
- 50×50 см
- 120×60 см
- 200×100 см
- 140×80 см
Вопрос 11. В отделении следует провести ряд гистохимических исследований, а для фиксации кусочков ткани необходим нейтральный формалин, которого нет в отделении. Нейтрализация формалина производится с помощью добавления к нему:
- уксусной кислоты
- азотнокислого серебра
- углекислой магнезии
- медного купороса
- пикриновой кислоты
Вопрос 21. Начало формы
С какой целью под стеклом рабочего стола лаборанта должен находится белый лист бумаги размером 9×12 см:
- для создания соответствующего фона, облегчающего работу с окрашенными объектами
- для записи наиболее распространенных методик окраски
- для создания соответствующего фона, облегчающего работу с неокрашенными объектами
- для решения вопроса о качестве фиксации кусочка ткани
- для улучшения качества заливки кусочков ткани в парафин
Вопрос 31. При маркировке материала в растворе формалина, запись проводят с помощью:
|
|
|
- акварельных красок
- авторучки с красной пастой
- авторучки с синей пастой
- простого карандаша
- авторучки с черной пастой
Вопрос 41. Норма расхода спирта на один объект биопсии:
- 10 г
- 20 г
- 30 г
- 40 г
Тестовые задания по теме "Техника гистологического исследования"
1. Помещения для проведения гистологических исследований включают:
- комната для приёма и вырезки операционно-биопсийного материала;
- гистологическая лаборатория;
- фиксационная и моечная комнаты;
- комната для хранения гистологического архива.
2. Отметьте необходимые документы в патологоанатомическом отделении:
- протокол патологоанатомического вскрытия;
- бланки врачебного свидетельства о смерти;
- бланк-направление на гистологическое и цитологическое исследование;
- алфавитная книга операционного и биопсийного материала;
- журнал регистрации операционно-биопсийного материала.
3. Ответственность за правильность оформления врачебного свидетельства о смерти несёт:
- заведующий отделением;
- врач, подписавший свидетельство о смерти;
- лаборант, заполняющий свидетельство о смерти.
4. Сроки хранения влажного архива, блоков и стёкол в паталогоанатомическом отделении при часто встречающейся патологии:
- 1 год;
- 10 лет;
- пожизненно;
- 2 года;
- 6 месяцев.
10.При фиксации в кислом формалине в срезах может образоваться тёмно-коричневый пигмент в виде глыбок, который удаляют, помещая срезы в:
- 1-5% раствор аммиака;
- 70% спирт;
- 10% раствор лимонной кислоты.
11. Назовите фиксаторы, используемые для костной ткани:
|
|
|
- формалин;
- жидкость Карнуа;
- жидкость Буэна;
- жидкость Гелли (ценкер-формол);
- этиловый спирт.
12. Декальцинацию костного материала проводят в:
- азотной кислоте;
- трилоном Б;
- муравьиной кислоте;
- формалином;
- пикриновой кислоте.
13.Обезвоживание тканей возможно с помощью:
- этилового спирта восходящей концентрации;
- 99% изопропилового спирта;
- диоксана;
- глицерина.
| 20. Температура плавления твёрдого парафина: - 38-46ºС; - 56-58ºС; - 52-56ºС; - 68-76ºС. 21. Парафин растворяется в: - спирте; - хлороформе; - ксилоле; - соляной кислоте; - серной кислоте. 22. Эластичность парафину придаёт: - касторовое масло; - воск; - ксилол; - дибутилфталат; - вазелиновое масло. 23. Парафин и хлороформ для составления парафиновой каши берутся в соотношении: - 1:3; - 1:1; - 1:10; - 1:20; - 1:4. |
30. Срезы могут быть сморщенными, закручиваться из-за:
- недостаточного угла наклона ножа;
- загрязнения парафина;
- высокой температуры в помещении;
- низкой температуры в помещении;
- заливки материала в легкоплавкий парафин.
31.Если срезы сморщенные, закручиваются, нужно:
- увеличить угол наклона ножа;
- перед получением срезов поместить материал в холодильник;
- декальцинировать объект;
- перезалить в более тугоплавкий парафин;
- уменьшить угол наклона ножа.
31. Причина, прилипания среза к ножу:
- высокая температура в помещении;
- плохая пропитка материала;
- электризация.
33.Если срез прилипает к ножу, нужно:
- перед получением среза подышать на блок;
- перед получением среза поместить блок в холодильник;
- перезалить в более тугоплавкий парафин;
- сменить нож на хорошо заточенный.
40. Если при работе на замораживающем микротоме ткань крошится, нужно:
- ткань слегка подморозить;
- «подогреть» ткань пальцем;
- взять другой кусочек ткани из архива;
- поместить кусочек ткани в физиологический раствор.
41.Замороженные срезы хранят:
- в 5-12% формалине;
- в 70% спирте;
- в 96% спирте.
42. Критерий достаточной обработки срезов в ксилоле:
- потемнение кусочка;
- просветление кусочка;
- изменение цвета кусочка.
43.Назовите оптимальный угол наклона ножа в санном микротоме:
- 7-9 градусов;
- 13-15 градусов;
- 25-30 градусов.
65. Результат окраски гематоксилином-эозином:
- ядро красное, цитоплазма жёлтая;
- ядро синее, цитоплазма розовая;
- ядро и цитоплазма синие;
- ядро не окрашивается, цитоплазма голубая.
66. Методы определения полисахаридов:
- ШИК-реакция;
- окраска по Ван-Гизону;
- метод Беста;
- окраска гематоксилином и эозином;
- метод Шабадаша.
67.Метод выявления кислых глизаминогликанов:
- метод Хейла;
- метод Гриммелиуса;
- метод Оса;
- метод Фельгена;
- метод Браше.
68. Фуксиленом окрашиваются волокна:
- коллагеновые;
- ретикулярные;
- эластические.
69. Вещество, которое выявляется при помощи реакции Шабадаша:
- жиры;
- гликоген;
- белки;
- кальций;
- железо.
Ситуационные задачи по теме "Методы и техника микроскопии"
Задача 5. При изучении микропрепарата в световом микроскопе интересуемая структура находится у края поля зрения, справа. В какую сторону следует переместить микропрепарат на предметном столике микроскопа, чтобы она оказалась в центре поля зрения?
Ответ: влево.
Задача 7. Исследователю предстоит изучить структуры клетки размером меньше 0,2 мкм. Какие методы исследования нужно ему рекомендовать?
Ответ: ультрафиолетовую микроскопию (для рассмотрения доступны объекты размером 0,1 мкм), флюоресцентную (люминисцентную) микроскопию (для рассмотрения доступны объекты размером от 0,13 мкм(при использовании ближних УФ лучей) до 0,25 мкм(при использовании сине-фиолетовых лучей)).
ПРИЛОЖЕНИЕ 3
