Предстерилизационная очистка и стерилизация

ЛД. 24.03.20- Клиника - Зейналиева Э.Н. группа 1-1 Практика№1

План занятия (практическое) № 1

Тема занятия: Этапы лабораторных исследований. Изучение видов контроля качества в КДЛ. Проведение мероприятий по соблюдению СПЭР и контролю качества в лаборатории.

Дисциплина: МДК.01. 01. Теория и практика лабораторных общеклинических исследований

Специальность: 31.02.03 Лабораторная диагностика

Курс 1                                    

Цели занятия:

Образовательные:

· Изучить этапы лабораторных исследований

· Определить основные методы общеклинических исследований.

Ход занятия

Организационный момент (Приветствие, проверка присутствующих, внешнего вида студентов, сообщение темы, учебных целей занятия)                                              Инструктаж по охране труда ( роспись в журнале по технике безопасности )

Мотивация (цели) занятия:

1. Изучить устройство клинико – диагностической лаборатории,

2. Принципы унификации и контроля качества в КДЛ.

3. Санитарно-противоэпидемический режим в КДЛ

1. Основные принципы работы лаборантов в КДЛ 2. Обязанности медицинского лабораторного техника 3. Обеспечение биологической безопасности при работе в КДЛ 4. Этапы обработки лабораторной посуды 5. Виды дезинфекции 6. Приготовления  растворов 7. Виды стерилизации

Оценка знаний студентов (проверка исходного уровня знаний):

а) проверка знаний (контролирующие материалы с эталонами ответов и критериями оценки прилагаются к плану).

1. вопросы  по пройденному материалу (см. приложение)

Б) проверка внеаудиторной самостоятельной работы

таблицы, рефераты по темам.

в) подведение итогов контроля:

Оценивание, замечания по работе.

Практическая часть:

а) подготовка студентов к самостоятельной работе (проведение инструктажа по выполнению заданий):

б)  самостоятельная работа студентов (алгоритмы проведения СПЭР, этапов лаб-х исследований и обработки лабораторной посуды в приложениях)

Задание студентам для выполнения лабораторной работы:

В) подведение итогов самостоятельной работы

Оформление в рабочей тетради выводов о проделанной работе

Итоговый контроль 

Проверка преподавателем работ студентов

Задание на дом

Подготовка по темам «лекция 1, 2 и п/з № 1»

- Составление вопросников с ответами по темам лекций 1,2

- Составление схем по этапам проведения лабораторных исследований, СПЭР в КДЛ, этапы обработки лабораторной посуды                                           - подготовить сообщение на тему  «Виды исследований в КДЛ»

Подведение итогов занятия, оценка работы студентов

Преподаватель оценивает работу студентов, корректирует ошибки, отвечает на вопросы студентов.

 

Преподаватель высшей категории _________________к.б.н. Зейналиева Э.Н.

Дезинфекция – это уничтожение патогенных и условно условно-патогенных микроорганизмов на всех поверхностях организма (на полу, на стенах, выключателей, жёсткой мебели, на посуде).

Задачи: является предупреждение или ликвидация накопления размножения и распространение возбудителей заболеваний дезинфекция может быть очаговой и профилактическая.

Профилактическая задача - для защиты людей от заражения проводится в виде текущей ежедневной влажной уборке 1 раз в день.

Применяют 4 вида дезинфекций:

1) Механический - проветривание и вентиляция помещения. Стирка белья, обработка поверхности пылесосом. Протирание поверхности влажной ветошью.

2) Физический - высокотемпературной обработке используется кипячение в дистиллированной воде или в воде с добавлением питьевой соли кроме того используется паровой метод и воздушный метод (сухожаровой шкаф) эти методы надёжные, безопасные, экологически чистые.

3) Химический - мед.предметы обрабатываются с помощью в жидком, газообразном состоянии.

Требования:дез.раствор должен быть налит в пластмассовые, стеклянные или эмалью покрыты без повреждения с крышками емкости, могут быть использованы специальные ёмкости внутри с решётками. Обязательно на ёмкости с растворами должны быть: название дез.раствора, срок приготовления, и срок гордости.

4) Биологический - используется редко основан на использование антагонизмом различных видов микроорганизма. При использовании бактериофагов (вирусов бактерий) уничтожаются стафилококки, брюшнотифозные бактерий. Он используется в коммунальной сфере для обеззараживания сточных вод.

Использованные изделия промывают в емкости с водой. Промывные воды обеззараживают кипячением в течение 30 мин. или засыпают сухой хлорной известью в соотношении 200 г на 1 л, перемешивают и обеззараживают в течение 60 мин. Промытые изделия кипятят в закрытой емкости в воде 30 мин. или в 2%-м растворе соды в течение 15 мин. (В случае кипячения изделий в 2%-м растворе соды дальнейшая предстерилизационная очистка не проводится).

Лабораторные инструменты могут быть обеззаражены погружением в дезинфицирующий раствор на 60 мин.

В качестве дезинфицирующих используются следующие растворы: 3%-й раствор хлорамина; 6%-й раствор перекиси водорода 6%-й раствор перекиси водорода с 0,5%-м моющим средством; 4%-й раствор формалина; 0,5%-й раствор нейтрального гипохлорита кальция; 0,5%-й сульфохлорантин.

Предстерилизационная очистка и стерилизация

После дезинфекции лабораторный инструментарий, соприкасающийся с раневой поверхностью или слизистыми оболочками обследуемого, подлежит обязательной предстерилизационной очистке и стерилизации в соответствии с ОСТ 42–21–2–85 «Стерилизация и дезинфекция изделий медицинского назначения».

Предстерилизационная обработка - это удаление всех мелких частиц оставшиеся на медицинских исследований после дезинфекции. Используются средства, в состав которых входят вода перекись водорода моющее средство. Предстерилизационную очистку проводят с применением моющих растворов. Для приготовления 1 л моющего раствора отмеривают 5 г стирального порошка без биодобавок, 16 мл 33%-ого раствора перекиси водорода и 979 мл воды. Моющий раствор можно использовать в течение суток, если цвет раствора не изменился.При проведении очистки изделия замачивают при полном погружении в моющем растворе, подогретом до +50°С, на 15 минут. Каждое изделие моют в растворе при помощи ерша и ватно-марлевого тампона не менее 0,5 мин., затем ополаскивают проточной водой в течение 10 мин., а затем — дистиллированной водой.Качество предстерилизационной очистки изделий оценивают на наличие крови путем постановки амидопириновой или азопирамовой пробы, на наличие остаточных количеств щелочных компонентов моющего вещества — путем фенолфталеиновой пробы.

Стерилизация: - уничтожение всех микроорганизмов и их вегетативных форм, например, спор (обеспложивание) - обеспечивает гибель в стерилизуемом материале вегетативных и споровых форм патогенных и непатогенных микроорганизмов. Стерилизации должны подвергаться все предметы или отдельные детали диагностической аппаратуры, которые соприкасаются с раной, кровью и другой биологической жидкостью. А также инъекционными приборами, с поврежденными слизистыми оболочками и др. Стерилизация - является важнейшим звеном в комплексе неспецифической профилактики ВБИ (внутрибольничной инфекции), фактором передачи возбудителей которых, служат нестерильные изделия медицинского назначения, но во всех случаях, стерилизация является последним барьером, защищающим пациента от таких инфекций.

Стерилизация медицинского оборудования – процедура санитарно-гигиенической обработки изделий, представляющих эпидемиологическую опасность и способных стать источником распространения инфекционных заболеваний. Щ адящий режим - 120°С - 1,1 атм. - 45 минут

Изделия из коррозионностойкого металла, стекла, изделий из текстильных материалов, резины, латекса и отдельных полимерных материалов (полимер высокой прочности, ПВХ, пластика).Изделия из резины, латекса и полимерных материалов. Стерилизацию проводят в стерилизационных коробках (биксах) без фильтров и с фильтрами; в двойной мягкой упаковке из бязи, пергамента, мешочной влагопрочной бумаги, бумаги для упаковки продукции на автоматах марки Е, бумаги марки ОКМВ-120, бумаги двухслойной крепированной бумаги. Изделия, простерилизованные в биксах без фильтров, в упаковке из 2-слойной бязи - 3-е суток; в пергаменте или мешочной влагопрочной бумаги, бумаги двухслойной крепированной, в стерилизационных коробках с фильтром - могут храниться 20 дней. Паровой стерилизатор (автоклав)


Стерилизация в среде нагретых шариков (гласперленовый метод)

В стерилизаторах, стерилизующим средством в которых является среда нагретых стеклянных шариков (гласперленовые шариковые стерилизаторы), стерилизуют изделия, применяемые в стоматологии (боры зубные, головки алмазные и др.). Изделия стерилизуют в неупакованном виде и используют сразу же. Ясно, что этот метод применим при децентрализованной стерилизации. Разработана также стерилизация ультразвуком и электротоками разной частоты, которая ещё не приобрела практического значения для деятельности лечебных учреждений.

 

2. Химическая стерилизация:

 

Химические методы основаны на газовой (воздействие окисью этилена), плазменной (обработка парами перекиси водорода в низкотемпературной плазменной среде), жидкостной (обработка химическими растворами – альдегид-, кислород- содержащими) технологиях. Химические стерилизующие составы обязаны обладать высоким бактерицидным действием (в том числе в отношении устойчивых бактерий и микробов), хорошей проникающей способностью и токсикологической безопасностью. Поводом к развитию химической стерилизации послужило распространение эндоскопических приборов, некоторые рабочие части которых не выдерживают высоких температур, применяемых в физических стерилизующих установках.

 

Приготовление исходного раствора:

На 1 литр раствора отвешивают 100 г амидопирина и 1,0-1,5 г солянокислого анилина. Вещества смешивают в сухой посуде и заливают 95% этиловым спиртом до объема 1,0 л. Смесь тщательно перемешивают до полного растворения ингредиентов. Готовый раствор может храниться в плотно закрытом флаконе в темноте при 4 °С в холодильнике - 2 месяца; в темноте при комнатной температуре (18-23 °С) - не более 1 месяца. Умеренное пожелтение реактива в процессе хранения без выпадения осадка не снижает его рабочих характеристик.

Помните:

Нельзя подвергать проверке горячие инструменты, а также держать раствор на ярком свету, при повышенной температуре (возле нагревательных приборов).

Пригодность рабочего раствора азопирама проверяют в случае необходимости: 2-3 капли наносят на кровяное пятно. Если не позже, чем через 1 минуту появляется фиолетовое окрашивание, переходящее затем в сиреневый цвет, реактив пригоден к употреблению (может появиться буроватое окрашивание). Если окрашивание в течение 1 минуты не появляется, реактивом пользоваться нельзя.

Приложение 1

Алгоритм № 1



Понравилась статья? Добавь ее в закладку (CTRL+D) и не забудь поделиться с друзьями:  



double arrow
Сейчас читают про: