Индикация наличия золотистого стафилококка

Метод основан на выявлении характерного роста бактерий на элективных средах, изучении морфологических свойств, наличии ферментов плазмокоагулазы и гемотоксина,

являющихся факторами патогенности золотистого стафилококка.

1 г продукта и 1 мл разведения (10–1) засевают в пробирку с 6–7 мл среды обогащения (солевого рыбопептонного бульона, содержащего 7% NaCl). При исследовании соленых продуктов (свыше 5%) дополнительно проводят посев в 1%"ный глюкозный РПБ. Посевы помещают в термостат при температуре +37_С на 24 ч. Из сред обогащения (солевого, глюкозного бульонов) проводят посев на элективные среды: желточно- или молочно-солевой агар или среду Байрд–Паркер. Посевы выдерживают при температуре +37_С в течение 24 ч. Из типичных для стафилококков колоний (на молочно" и желточно-солевом агаре с радужным венчиком вокруг колоний; на среде Байрд–Паркер — черные, блестящие с узким белым ободком, окруженные прозрачной зоной) готовят препараты, затем окрашивают по Граму, микроскопируют, отсеивают на скошенный агар в пробирках для получения чистой культуры и инкубируют при температуре +37_С в течение 24 ч. С суточной культурой ставят реакцию плазмокоагуляции.

Реакция плазмокоагуляции. В пробирку с 0,5 мл кроличьей плазмы, разведенной физраствором в соотношении 1: 5 (1 мл плазмы + 4 мл физраствора), вносят петлю суточной культуры стафилококка. Для контроля одну пробирку с плазмой оставляют незасеянной. Пробирки помещают в термостат при температуре +37_С. Учет реакции плазмокоагуляции проводят через 2, 4 ч. Реакция считается положительной, если сгусток образовался в течение 24 ч.