Теория вопроса
В большой популяции клеток с известной продолжительностью жизни в каждую единицу времени гибнет определенное количество стареющих клеток. Кроме того, клетки могут подвергнуться неожиданному разрушению, особенно при определенных патологических состояниях.
Измерения выживаемости эритроцитов проводятся в основном для установления продолжительности жизни собственных клеток человека в его кровяном русле, менее часто – продолжительности жизни нормальных донорских клеток в кровотоке больного или клеток больного у здорового реципиента. Изучение выживаемости важно также и при исследовании условий хранения крови, предназначенной для трансфузии, при потере крови, при гемолитических анемиях и т.д.
При установлении продолжительности жизни эритроцитов у экспериментальных животных обычно применяется метчик 59Fe (период полураспада 45 дней). В клинической же практике рекомендуется метод мечения эритроцитов 51Cr – источник γ-лучей (период полураспада – 27,8 дня). 51Cr имеет медленную скорость элюции (Т1/2 около 64 дней), он не реутилизируется из распавшихся эритроцитов. Определение продолжительности жизни эритроцитов устанавливается по скорости исчезновения радиоактивного 51Cr или другого метчика из кровотока. При решении этого вопроса к метчикам предъявляются следующие требования:
|
|
а) метчик должен прочно связываться с первоначально помеченными клетками или, если обнаруживается элюция (выведение) метчика, она должна быть незначительной, а её скорость известной, так как неизвестная скорость элюции метчика делает невозможными измерения;
б) метчик не должен повреждать клетки;
в) метчик не должен реутилизоваться после разрушения меченых клеток.
Выбор метчика зависит от задачи исследования. Так, эритроциты метят 32P, 59Fe, 55Fe, 42K, 86Rb, однако наиболее эффективен в качестве метчика 51Cr.
Метод метки эритроцитов 51Cr
В шприц, содержащий 3 мл кислого цитратно-глюкозного раствора (двузамещённый цитрат натрия – 2г, глюкоза –3г, вода – 120 мл), набирают около 10 мл крови. Содержимое шприца переливают в центрифужный стакан и центрифугируют на малых оборотах. Плазму, стабилизированную АСД, удаляют и используют для приготовления промывного раствора (2-3 % плазма на стерильном физиологическом растворе). Около 100 мкКи высокой удельной активности Na251CrO4 (стерильный изотонический раствор) добавляют к уплотнённым клеткам, и смесь инкубируют около 30 мин при комнатной температуре. Наибольший процент включения 51Cr отмечается чаще в присутствии цитрата, чем гепарина, и больше в уплотнённых клетках, чем в цельной крови.
После инкубации эритроциты дважды промывают 2 % плазмой на стерильном изотоническом растворе и ресуспендируют в растворе плазмы. Известное количество этой суспензии (10 мл) вводят внутривенно. Затем через 15 мин или более (при полном смешивании меченых клеток с эритроцитами кровотока) забирают кровь без стаза из вены противоположной стороны, а не из той, куда была введена суспензия. Последующие образцы крови берут через интервалы в 5-6 дней и так до 25–го дня. Счет радиоактивных импульсов производят сцинтилляционным счетчиком. По полученным данным величины активности образцов строится кривая в полулогарифмических координатах и по кривой определяется время снижения активности на ½ - время полужизни эритроцитов (Т½).
|
|
Пример. Активность пробы с мечеными эритроцитами через 24 ч после введения 51Cr составила 2000 имп./мин. По таблице 5-1 определяем процент активности 51Cr в момент его введения, зная при этом срок жизни к данному времени. Допустим, что срок жизни 51Cr к началу введения равнялся 22 дням, следовательно, процент активности на 23 день жизни 51Cr будет равен 56,2 % от исходной величины (100 %). Затем определяют активность пробы через несколько дней (например, через 5 дней), нами получено 1300 имп./мин.
Процент активности 51Cr на 28-й день, определяемый по таблице, уже составил 49,6 % от первоначальной величины. Следовательно, за 5 дней произошло снижение активности 51Cr, поэтому необходимо внести поправку на этот распад, т.е. подсчитать количество импульсов, приходящихся на процент снижения активности 51Cr.
Таблица 19-1
Распад 51Cr
День | % | День | % | День | % |
1 | 97,5 | 21 | 59,1 | 42 | 34.0 |
2 | 95,7 | 22 | 57,6 | 44 | 33,2 |
3 | 92,7 | 23 | 56,2 | 46 | 31,6 |
4 | 90,4 | 24 | 54,8 | 48 | 30,1 |
5 | 88,2 | 25 | 53,5 | 50 | 28,0 |
6 | 86,0 | 26 | 52,2 | 52 | 27,2 |
7 | 83,0 | 27 | 50,9 | 54 | 25,9 |
8 | 81,8 | 28 | 49,6 | 56 | 24,6 |
9 | 79,8 | 29 | 48,4 | 58 | 23,4 |
10 | 77,8 | 30 | 47,2 | 60 | 22.3 |
11 | 75,9 | 31 | 46,1 | ||
12 | 74,0 | 32 | 44,9 | ||
13 | 72,2 | 33 | 43,7 | ||
14 | 70,4 | 34 | 42,7 | ||
15 | 68,7 | 35 | 41,6 | ||
16 | 67,0 | 36 | 40,6 | ||
17 | 65,3 | 37 | 39.0 | ||
18 | 63,7 | 38 | 38,6 | ||
19 | 62,1 | 39 | 37,0 | ||
20 | 60,6 | 40 | 36,7 |
В нашем случае процент активности пробы равняется 6,6 %.
56,2 % - 49,6 % = 6,6 %
составляем пропорцию и определяем количество импульсов:
2000 имп/мин. – 56,2 %
Х - 6,6 %
Х = 2000 ∙ 6,6 = 235 имп/мин.
56,2
следовательно, активность пробы с поправкой на распад 51Cr будет равна: 1300 + 235 = 1535 имп/мин.
активность пробы в % от исходного:
2000 имп/мин. – 100 %
1535 имп/мин. – Х
Х = 76,7 %
Поправка на элюцию на 5-й день составляет 1,057 (табл. 5-2). Следовательно, выживаемость эритроцитов ко дню опыта (на 5-ый день) будет равна 76,7 % ∙ 1,057 = 81 %
Таблица 19-2
Поправка на элюцию 51Cr
День | Поправка | День | Поправка | День | Поправка |
0 | 1,0 | 13 | 1,151 | 26 | 1,325 |
1 | 1,01 | 14 | 1,164 | 27 | 1,339 |
2 | 1,02 | 15 | 1,176 | 28 | 1,354 |
3 | 1,03 | 16 | 1,189 | 29 | 1,369 |
4 | 1,04 | 17 | 1,202 | 30 | 1,384 |
5 | 1,057 | 18 | 1,216 | 31 | 1,399 |
6 | 1,068 | 19 | 1,228 | 32 | 1,414 |
7 | 1,079 | 20 | 1,242 | 33 | 1,429 |
8 | 1,091 | 21 | 1,256 | 34 | 1,445 |
9 | 1,102 | 22 | 1,269 | 35 | 1,461 |
10 | 1,114 | 23 | 1,283 | 36 | 1,476 |
11 | 1,127 | 24 | 1,297 | 37 | 1,493 |
12 | 1,139 | 25 | 1,312 |
Для определения срока жизни эритроцитов результаты всех измерений наносят на график в полулогарифмическом масштабе. По оси абсцисс отмечают время в днях, а по оси ординат – процент выживших эритроцитов ко дню опыта. По графику устанавливают время в днях, за которое концентрация 51Cr снижается вдвое (до 50 % от исходной радиоактивности). Эту величину называют временем полужизни меченых эритроцитов. Полученные величины являются относительными.
Срок полужизни эритроцитов в норме у человека составляет 30 + 5 дней, в то время как при гемолитических анемиях он уменьшается до 5-15 дней.
Задача к практическому занятию:
Дано: в день введения 51Cr срок его жизни – 22 дня.
Активность пробы после введения составила:
|
|
через 24 ч – 1900 имп./мин
через 5 дней – 1300 имп./мин
через 8 дней – 1000 имп./мин
через 11 дней – 600 имп./мин
через 15 дней – 300 имп./мин
Определите процент выживаемости эритроцитов в каждый из указанных сроков и на основании полученных данных постройте кривую выживаемости эритроцитов и определите время полужизни эритроцитов.
Вопросы для обсуждения:
1. В каких случаях необходимо знать о продолжительности жизни эритроцитов?
2. В чем преимущества и недостатки радиоактивного хрома, применяемого в гематологических исследованиях?
ЛИТЕРАТУРА
ОСНОВНАЯ
1. Акиев Р.М, Атаев А.Г., Багненко С.С. Лучевая диагностика: т.1 ГЭОТАР-Медиа, 2007.
2. Малаховский В.Н., Труфанов Г.Е., Рязанов В.В. Радиационная безопасность при радионуклидных исследованиях. Учебно-методическое пособие для врачей. – Санкт-Петербург: ЭЛБИ-СПБ, 2008
3. Козлов Ю.А., Новицкий В.В., Байков А.Н. Радионуклиды в медико-биологических исследованиях. – Томск: Изд-во Том. ун-та, 1994.
4.Радионуклидная диагностика для практических врачей. Учебное пособие / Под ред. Ю.Б. Лишманова, В.Н. Чернова. – Томск: STT, 2004.
5. Терновой С.К., Синицын В.Е. Лучевая диагностика и терапия: учебное пособие ГЭОТАР-Медиа, 2009.
ДОПОЛНИТЕЛЬНАЯ:
6. Кинетические аспекты гемопоэза / Под ред. Г.И. Козинца, Е.Д. Гольдберга. – Томск: Изд-во Том. ун-та, 1982
7. Уразова О.И., Новицкий В.В. Лабораторная диагностика гематологических синдромов и болезней. Учебное пособие. – Томск: Изд-во Печатная мануфактура, 2008.
ПРИЛОЖЕНИЕ
Ответы на тестовые задания:
Занятие 1.
1 - 3; 2 - 4; 3 - 3; 4 - 2; 5 - 2; 6 - 3; 7 - 4; 8 - 4; 9 - 3.
Занятие 4.
1 - 4; 2 - 3; 3 - 2; 4 - 3; 5 - 4; 6 – 3; 7 - 2,5; 8 – 2; 9 – 1,2,5; 10 – 4; 11 – 5; 12 – 1; 13 – 4.
Занятие 5.
1 - 4; 2 - 1; 3 - 3; 4 - 1; 5 - 5; 6 - 3; 7 - 3; 8 - 1; 9 – 1,3.
Занятие 6.
1 – 1,2,4; 2 - 2; 3 - 4; 4 - 3; 5 - 4; 6 - 5; 7 - 3; 8 - 1,3; 9 - 2; 10 - 1.
Занятие 13.
1 - 1; 2 – 1,2,3,6,7; 3 – 2,3,4,5; 4 - 2,4,6,7; 5 – 1; 6 – 1,2,3,4,5,6.
Ответы на ситуационные задачи:
Занятие 2.
Задача 1. Доза поглощенная – 0,13 Гр. Доза эквивалентная – 0,41 Зв.
Задача 2. Упервого пациента – 0,05 Зв; у второго – 0.50 Зв; у третьего – 1,00 Зв. Гамма и нейтронное облучение может быть использовано при лечении опухолей различных локализаций, альфа лучи – для опухолей поверхностных локализаций.
|
|
Задача 3. Доза экспозиционная – 0,011 Р.
Задача 4. Доза экспозиционная – 0,1 Р.
Занятие 14.
Задача 1 -3.
Задача 2- 2
Задача 3 -2.
Задача 4 -2
Задача 5 -3.
Задача 6- 2.
Задача 7 -3.
Задача 8.ОЛБ.Желудочно-кишечный синдром.
Задача 9. ХЛБ.1-й степени тяжести.
Задача 10. ХЛБ.2-я степень тяжести, период формирования.
Задача 11. ХЛБ.1-й степени тяжести.
Занятие 17.
Задача 1. Катаракта левого глаза, стойкая эпиляция бровей и ресниц.
Задача 2. Глаукома, катаракта обоих глаз, хромосомные аберрации в клетках костного мозга, остеопороз, очаговая эпиляция.
Задача 3. Гипоплазия кроветворения – результат действия ионизирующей радиации. Лейкозы относят к стохастическим отдаленным эффектам.
Занятие 18.
Задача 1 - 1.
Задача 2.131I.
Задача 3. 99mTc.
Задача 4-2.
Задача 5.Нет, ввиду малой проникающей способности β- частиц, испускаемых радионуклидом.
Задача 6-2.
Задача 7.0,0027 мл.
Задача 8.ОЦЭ - 2,0 л; ОЦК - 4,4л.
Задача 9. ОЦК – 5,0л; ОЦП - 3,0 л.