Таблица 8. Расширенная характеристика биохимических свойств родовых групп Enterobacteriaceae

Примечание: *(1) Температура указана по Цельсию (C);

*(2) Приведены свойства, характерные для K. pneumoniae;

*(3) Приведены свойства без Y. pestis;

*(4) Приведены свойства, характерные для Erwinia herbicola;

 - не изучено.

Воспроизведение тестов минимального дифференцирующего ряда требует соблюдения известных правил.

При определении подвижности посев культуры следует делать уколом петлей или иглой по центру столбика полужидкого СПА (0,3-0,4%), не доходя до дна пробирки.

Индолообразование определяют путем добавления реактивов Эрлиха или Ковача к культуре, выращенной в безуглеводной среде - пептонной воде (1-2%), бульоне Хоттингера, бульоне на триптическом переваре казеина. Вместо растворов реактивов Эрлиха или Ковача можно использовать пропитанную одним из них полоску фильтровальной бумаги (индикаторная бумажка "на индол"), которую помещают между стенкой и пробкой пробирки с культурой, выращенной в какой-либо из указанных сред или в полужидком агаре, используемом для определения подвижности. Все указанные для определения индолообразования питательные среды следует предварительно проверять с тест-культурами, образующими индол.

Для выявления фенилаланиндезаминазы делают массивный посев штрихом по скошенной части соответствующей среды и после 18-24 часов инкубации на выросшую культуру наносят несколько капель 10% раствора железа (III) хлорида .

При определении декарбоксилаз лизина и орнитина, дигидролазы аргинина наряду с посевами в среды с этими аминокислотами необходимо делать посев в контрольную пробирку, содержащую основу без аминокислоты. После посевов во все пробирки, включая контрольную, вносят стерильное вазелиновое масло слоем 4-5 мм.

Тесты со средами Симонса и ацетатной выявляют способность испытуемых культур использовать цитрат и ацетат (соответственно) как единственные источники углерода. Для посева на эти среды берут минимальную инокулирующую дозу, снимая посевной материал без прикосновения петли к среде культивирования. Более целесообразно использовать для посева на эти среды суспензию бактериологической петли культуры в 1-1,5 мл ИХН, не допускается высев из бульона и других жидких питательных сред.

Для постановки тестов с метиловым красным и Фогеса-Проскауэра используют среду Кларка в объеме 5-6 мл в пробирке, посев делают обычным способом. Первоначальный учет проводят через сутки, для чего по 1 мл культивированной жидкости переносят в две пробирки, в одну из которых добавляют 1-2 капли реактива метилового красного, а во вторую - последовательно 0,5 мл 6% спиртового раствора альфа-нафтола и 0,2 мл 40% раствора KOH. Оценку результатов реакций см. табл. 9. Тест с метиловым красным учитывают сразу после добавления реактива, а тест Фогеса-Проскауэра - в течение 5-10 минут после встряхивания или после 1-2 часов пребывания в термостате. Пробирку с неиспользованной культурой в среде Кларка продолжают инкубировать в термостате до 2-4 суток, когда указанные реакции дают более четкие результаты. Для некоторых энтеробактерий (например, гафний) результаты реакций с метиловым красным и Фогеса-Проскауэра различны при разных температурах культивирования (22° или 37°C), что может быть использовано в качестве дополнительного дифференцирующего теста.