Таблица 9. Результаты основных биохимических реакций на комбинированных средах и минимальном дифференцирующем ряде

 

Тест или субстрат

Реакция через 18-24 часа культивирования при 37°С

Максимальные сроки учета результатов в случаях замедленных реакций (в сутках)

положительная отрицательная
Подлинность помутнение среды, диффузное или в отдельных участках вдоль укола среда остается прозрачной, рост строго по ходу укола 2 (с инкубацией посевов при 22°С)
Сероводород (в среде Олькеницкого или Клиглера) почернение в разной степени по всей среде или в отдельных участках отсутствие почернения в среде  
Индол (с применением индикаторной бумажки) покраснение индикаторной бумажки отсутствие изменения цвета индикаторной бумажки  
Фенилаланиндезаминаза зеленое окрашивание агаровой поверхности среды после добавления нескольких капель 10% раствора железа (III) хлорида    
Мочевина по Преусу* синее окрашивание среды пожелтение среды 2
Мочевина по Кристенсену малиновое окрашивание среды отсутствие изменения цвета 4
Ацетат натрия* наличие роста и синее окрашивание среды отсутствие роста и изменения цвета среды 4 (редко до 7)
Цитрат Симонса* наличие роста и синее окрашивание среды отсутствие и роста и изменения цвета среды 4 (редко до 14)
Реакция с метиловым красным в среде Кларка красное окрашивание среды после добавления реактива метилового красного желтое окрашивание среды после добавления реактива метилового красного 2-4
Реакция Фогеса-Проскауэра вишневое окрашивание среды после добавления реактивов (альфа-нафтола и КОН) отсутствие изменения цвета среды после добавления реактивов (альфа-нафтола и КОН) 2-4
Среды с аминокислотами (лизином, орнитином, аргинином) синее (при индикаторе бромтимол синий) или фиолетовое (при индикаторе бромкрезол пурпуровый) окрашивание среды при отсутствии указанных окрашиваний в контрольной пробирке отсутствие синего (фиолетового) окрашивания сред с аминокислотами, желтое окрашивание в контрольной пробирке 4
Малонат натрия* синее окрашивание среды отсутствие изменения цвета 2
Цитрат Кристенсена розово-красное окрашивание среды отсутствие изменения цвета 4
Желатин разжижение среды, не исчезающее после часового охлаждения в рефрижераторе (4-6°С) отсутствие разжижения среды или его исчезновение после часового охлаждения в рефрижераторе (4-6°С) 30
Среды с углеводами синее или розовое, красное (в зависимости от индикатора) окрашивание среды отсутствие изменения цвета 30

 

Примечание. * Указаны изменения цвета при индикаторе бромтимоловый синий.

 

Посевы для воспроизведения других тестов не требуют специальных пояснений, учет результатов см. табл. 9.

На этапе дифференциации родов могут быть использованы пробы с поливалентными сальмонеллезными и дизентерийным бактериофагами (диагностические жидкие или лечебные в таблетках). Таблетку лечебного фага перед постановкой пробы растворяют в 20 мл ИХН. Для воспроизведения пробы с фагом используют 2-х или 18-часовую бульонную культуру, можно применять также взвесь суточной агаровой культуры в ИХН. Тонко оттянутой пастеровской пипеткой или петлей диаметром 4-5 мм наносят две капли испытуемой культуры на хорошо подсушенный СПА в чашке Петри. На одну из капель после подсыхания наносят петлей или из очень тонкого капилляра пастеровской пипетки каплю фага, а на другую (служащую контролем) - каплю стерильного бульона. Бактериофаг применяют в неразведенном виде или в разведениях в соответствии с "Наставлением" к препарату. После постановки пробы чашки инкубируют при 37°C в течение 18-20 часов. При положительной реакции на месте нанесения фага появляется четко очерченный лизис (++++), полусливной лизис (+++), большее или меньшее число отдельных негативных колоний (++, +). При отсутствии лизиса (отрицательная реакция) в местах нанесения фага, как и в контроле, наблюдают сплошной рост культуры.

Как указывалось ранее, на этапе дифференциации родов возможна постановка ориентировочных серологических проб с поливалентными агглютинирующими сыворотками к сальмонеллам и шигеллам. При этом используют соответственно поливалентную смесь к сальмонеллам групп ABCDE (при отрицательном результате пробу повторяют со смесью O-сывороток к сальмонеллам редких групп) и поливалентную смесь сывороток к S. sonnei, S. flexneri 1-5, S. flexneri 6. Указанные ориентировочные пробы выполняют путем постановки реакции агглютинации на стекле с культурой, выросшей на среде первичной идентификации. В ходе исследования на ЭПЭ, как указывалось ранее, при отборе соответствующих колоний, давших агглютинацию с OKA сывороткой, делают посев не только на среду первичной идентификации, но и на скошенный СПА. Серологическое изучение эшерихий проводят с культурами, выращенными на скошенном СПА. Культуры, подозреваемые на принадлежность к ЭПЭ, исследуют повторно с поливалентной сывороткой OKA и при положительном результате - с OKB, OKC, OKD, OKE или соответствующими OK-иммуноглобулинами. При наличии положительной реакции культуру засевают в среды минимального дифференцирующего ряда (табл. 7) для подтверждения принадлежности культуры к роду Escherichia (в первую очередь ацетатную, цитратную Кристенсена и на подвижность).

Помимо постановки тестов, необходимых для установления родовой принадлежности выделенной культуры энтеробактерий, со среды первичной идентификации делают также высев на скошенный СПА, используемый для дальнейшей биохимической и серологической идентификации.

 


Понравилась статья? Добавь ее в закладку (CTRL+D) и не забудь поделиться с друзьями:  



double arrow
Сейчас читают про: