Тема. Патология системы гемостаза.
Цель занятия. Изучить причины, механизм развития, важнейшие показатели коагулограммы при патологии системы гемостаза.
Теоретические вопросы.
1. Механизмы тромборезистентности сосудистой стенки.
2. Роль тромбоцитов в механизмах гемостаза.
3. Понятие сосудисто-тромбоцитарного (первичного) гемостаза и коакуляционного (вторичного) гемостаза.
4. Методы исследования первичного и вторичного гемостаза. Понятие о коагулограмме.
5. Гиперкоагуляционно-тромботические состояния, тромбозы, этиология, патогенез, исходы.
6. Особенности тромбообразования в артериальных и венозных сосудах, принципы патогенетической терапии тромбозов.
7. Гипокоагуляционно-геморрагические состояния, характеристика, виды.
8. Нарушения первичного гемостаза, роль тромбоцитопений и тромбоцитопатий в их возникновении.
9. Нарушения вторичного гемостаза (дефицит прокоагулянтов, преобладание противосвертывающей системы), причины, механизм развития.
10. Синдром диссеминированного внутрисосудистого свертывания крови, этиология, патогенез, стадии, принцип терапии.
Работа №1. Характер нарушения свертывающей системы у кролика с ДВС-синдромом.
Материальное оснащение.
1. Пробирки центрифужные | - 8 шт. |
2. Штатив на 5 гнезд | - 4 шт. |
3. Пипетки на 0,2 мл | - 9 шт. |
4. Пипетки на 1 мл | - 1 шт. |
5. Пипетки на 5 мл | - 1 шт. |
6. Торсионные весы | - 1 шт. |
7. Водяная баня (на 370С) | - 2 шт. |
8. Термометр химический | - 2 шт. |
9. Фильтровальная бумага (5х5 см) | - 5 шт. |
10. Секундомер | - 2 шт. |
11. Термостат, установленный на 370С | - 1 шт. |
12. 0,277% раствор хлорида кальция | - 20 мл |
13. 0,05% раствор хлорида кальция | - 20 мл |
14. 5% раствор хлорида кальция | - 20 мл |
15. Раствор тромбопластина (навеску в 100 мг растворяют в ступке с 5мл физ. раствора и инкубируют 20 мин при 42-440С. Используют слой жидкости над осадком после отстаивания) | - 2 мл |
16. 0,85% раствор хлорида натрия | - 20 мл |
17. Плазма крови кролика (до ожоговой травмы) | - 2 мл |
18. Плазма крови кролика (после ожоговой травмы) | - 2 мл |
Методика проведения опыта.
У кролика, находящегося под легким наркозом (гексенал, 20мг/кг, в/б) из краевой вены берут кровь (в объеме 3 мл) в пробирку, содержащую 3,8% раствора цитрата натрия (в соотношении 9:1). Затем задние лапы животного погружают на 30с в кипящую воду, что ведет к появлению регионарного ожога. Через 30 мин после нанесения ожоговой травмы вновь забирают кровь в пробирку с цитратом натрия (в том же соотношении). После тщательного встряхивания пробирки центрифугируют при 3000 об/мин в течение 10 мин. Плазму отсасывают в сухую центрифужную пробирку, и с помощью унифицированных методов исследования свертывающей системы крови (см. ниже) определяют показатели коагулограммы до и после нанесения ожоговой травмы.
Путем сопоставления полученных результатов (опыт и контроль) у подопытного кролика выясняют стадию развития ДВС-синдрома. В заключении обсуждают возможные механизмы нарушения свертывания крови при ожоговой болезни.