Активирование анаэробного метаболизма в условиях дефицита кислорода

Устойчивые к затоплению (аноксии) растения, т.е. растения второй груп­пы, могут выдерживать его лишь ограниченный период времени. При затопле­нии они синтезируют АТФ за счет анаэробного метаболизма. В это время росто­вые процессы в корне (удлинение клеток) подавляются. Общая скорость синтеза белка снижается, а в экспрессии генов происходят заметные изменения. Проростки устойчивых к затоплению сортов кукурузы могут выдерживать аноксию на протяжении 3 — 5 дней в зависимости от генотипа и возраста растений. Устойчивость к затоплению возрастает, если молодые растения предваритель­но подвергнуть гипоксической обработке. Гипоксия активирует гликолиз, а также способствует формированию боковых корней, несущих аэренхиму в коре.

У чувствительных растений (первая группа), как и у резистентных, ско­рость гликолиза в ответ на затопление возрастает, однако они быстро повреж­даются, поскольку активирование гликолиза у них приводит к закислению цитоплазмы. Скорость синтеза белка в этих условиях снижается, митохондрии подвергаются деструктивным изменениям, процессы деления и растяжения клеток подавляются, нарушается транспорт ионов, а клетки корневой меристе­мы отмирают. В условиях аноксии у чувствительных растений аэренхима не образуется. Они способны выдержать затопление на протяжении не более су­ток. Таким образом, непродолжительное затопление активирует в растениях гликолитический путь, независимо от степени их устойчивости к дефициту О₂. Простые сахара, субстраты гликолиза, транспортируются из листьев по флоэ­ме в затопленные органы. В затопленных колеоптилях риса происходит гидро­лиз крахмала, дополнительно снабжающий растения гликолитическими суб­стратами.

В результате гликолиза 6-углеродная молекула глюкозы расщепляется на две 3-углеродные молекулы пировиноградной кислоты (ПВК); образуются две молекулы АТФ, а НАД⁺ восстанавливается до НАДН (рис. 8.30).

Рис. 8.30. Образование этанола и мо­лочной кислоты из конечного продук­та гликолиза — пировиноградной кислоты в условиях кислородного дефицита.

Образование обоих продуктов сопряже­но с регенерацией НАД⁺. Образование этанола не приводит к изменениям рН цитозоля, тогда как образование молоч­ной кислоты вызывает ацидоз

Чтобы глико­лиз продолжался в отсутствие митохондриального дыхания, необходимо по­стоянно регенерировать НАД⁺. Регенерация осуществляется в последующих реакциях ферментации. Существует два основных пути превращений ПВК, ведущих к регенерации НАД⁺. Первый путь связан с декарбоксилированием ПВК и последующим восстановлением продукта декарбоксилирования — ацетальдегида. В этих превращени­ях участвуют два фермента: пи-руватдекарбоксилаза (ПВД) и алкогольдегидрогеназа (АДГ) соот­ветственно. Конечным продуктом этих двух реакций является эти­ловый спирт. Второй путь осуще­ствляется лактатдегидрогеназой

(ЛДГ), которая восстанавливает ПВК до молочной кислоты (МК). Доли двух путей в превращениях ПВК различны в зависимости от вида растения, его устойчивости к недостатку кислорода, ткани, а также от продолжительности и степени О₂-дефицита. Оба пути ведут к регенерации НАД⁺, однако образова­ние молочной кислоты связано с нежелательным явлением — закислением цитозоля, тогда как при образовании этилового спирта рН цитозоля не изме­няется. Говоря иначе, накопление молочной кислоты может вызвать вторич­ные токсические эффекты в результате ацидоза цитоплазмы. В связи с этим можно считать, что важная роль в устойчивости растений к О₂-дефициту при­надлежит способности клетки предотвращать закисление цитозоля.

Согласно гипотезе Дэвиса—Робертса, регуляция рН цитозоля при анаэ­робном метаболизме зависит от соотношения активностей лактатдегидрогеназы и пируватдекарбоксилазы (см. рис. 8.30). Образующаяся при гликолизе ПВК превращается в МК в реакции, катализируемой ЛДГ. Этот фермент имеет оп­тимум активности при физиологических значениях рН цитоплазмы. При обра­зовании МК цитоплазма закисляется. По мере снижения рН ЛДГ прогрессив­но ингибируется, тогда как ПДК, включенная в путь образования этилового спирта, активируется, поскольку ее оптимум активности смещен в кислую область. Таким образом, аккумуляция МК стимулирует превращение ПВК в ацетальдегид, который далее восстанавливается алкогольдегидрогеназой до этилового спирта. В отличие от МК молекула этилового спирта не несет заряда и может легко диффундировать через плазмалемму в среду. В результате вклю­чения пути, ведущего к образованию этилового спирта, рН цитозоля стабили­зируется на уровне слабокислых значений. О таком регуляторном механизме свидетельствуют эксперименты с трансгенными растениями табака со сверхэк­спрессией пируватдекарбоксилазы. Повышенная активность ПДК у трансфор­мантов по сравнению с растениями дикого типа стимулировала ферментацию этанола и приводила к подавлению образования МК в цитозоле. Роль фермен­тации этанола в предотвращении ацидоза и в обеспечении устойчивости рас­тений к недостатку О₂ была продемонстрирована на мутанте кукурузы, дефи­цитном по АДГ. Нормальные растения кукурузы характеризуются резистент-ностью к затоплению. Мутант, дефицитный по алкогольдегидрогеназе, кото­рая не требуется для роста в аэробных условиях, оказался более чувствитель­ным к затоплению, чем растения дикого типа. В анаэробных условиях накопле­ние ацетальдегида в его клетках и закисление цитоплазмы было сильнее, чем у растений дикого типа. Таким образом, резистентные к затоплению растения обладают способностью переключать ферментацию молочной кислоты, при­водящей к ацидозу, на ферментацию этилового спирта — нейтрального соеди­нения. Чувствительные к затоплению растения, например горох, хотя и накап­ливают этанол в условиях О₂-дефицита, не способны избежать закисления цитоплазмы. У них ферментация этанола осуществляется параллельно с фер­ментацией МК.

При физиологических значениях рН цитозоля значительная часть образую­щейся МК находится в анионной форме и вследствие этого не может транс­портироваться через плазмалемму. При ацидозе доля недиссоциированных, т. е. способных пересекать мембрану, молекул молочной кислоты возрастает и она может диффундировать из цитозоля наружу. Считается, что выход образую­щейся при дефиците О₂ МК в наружную среду является одним из механизмов,

останавливающих закисление цитоплазмы. Полагают, что клетки толерантных к дефициту О₂ растений по сравнению с клетками чувствительных растений более эффективно экспортируют МК наружу.